Раствор карбамида что это: Карбамид (мочевина) | справочник Пестициды.ru

Карбамид (мочевина) | справочник Пестициды.ru

Физические и химические свойства

– бесцветные кристаллы без запаха.

• Растворимость в воде (в 100 г): при +20°C – 51,8 г, при +60°C – 71,7 г, при +120 °C – 95,0 г.
• Карбамид растворим в метаноле, этаноле, изопропаноле, изобутаноле, этилацитате, не растворим в хлороформе.
• Мочевина способна образовывать соединения с включением неорганических веществ и с органическими веществами.
• Температура плавления – +132,7°C.
• Плотность при +25°C – 1330 кг/м³
• При нагревании до 150°C и выше карбамид превращается в NH₄NCO, затем NH₃ и CO₂, биурет, циануровую кислоту.
• В разбавленных растворах при 200°C возможен полный гидролиз мочевины с образованием NH₃ и CO₂.^[7]

– бесцветные гранулы размером от 1 до 4 мм. Массовая доля азота в пересчете на сухое вещество – 46,2 %.

• Массовая доля биурета не должна превышать 1,4 %.
• Массовая доля воды по методу высушивания – не более 0,3 %.
• Рассыпчатость – не менее 100 %.^[3]

Применение

Выпускается две марки карбамида: А – для промышленности и Б – для растениеводства.^[3]

Сельское хозяйство

Карбамид применяют под все сельскохозяйственные культуры в качестве основного удобрения (для основного внесения), для ранневесенней подкормки озимых культур с немедленной заделкой в почву, а также для подкормки овощных и пропашных культур при помощи культиваторов-растениепитателей. Карбамид идеально подходит для некорневых подкормок растений^[8] и фертигации.^[6]

Зарегистрированные и допущеные к использованию в сельском хозяйстве на территории России марки карбамида размещены в таблице справа.^[4]

Промышленность

Карбамид используется в промышленности в качестве сырья при изготовлении смол, клеев, а также в животноводстве в качестве кормовой добавки.

^[3]

Поведение в почве

Мочевина в почве растворяется почвенным раствором и под влиянием уробактерий, выделяющих уразу (пециальный фермент), за два-три дня аммонифицируется и превращается в углекислый аммоний:

CO(NH₂)₂ + 2H₂O → (NH₄)₂CO₃

Углекислый аммоний – соединение нестойкое, на воздухе разлагается, образуя бикарбонат аммония и аммиака:

(NH₄)₂CO₃ → NH₄HCO₃ + NH₃

По этой причине при внесении мочевины без заделки в почву в отсутствие осадков часть азота в виде аммиака теряется. Такие потери значительнее в почвах с нейтральной и щелочной реакцией.

Углекислый аммоний, заделанный в почву, подвергается гидролизу. При этом образуется бикарбонат аммония и гидроксид аммония:

(NH₄)₂CO₃ + H₂O → NH₄HCO₃ + NH₄OH

Образующийся при внесении в почву карбомида аммоний поглощается коллоидной фракцией и постепенно усваивается растениями. Установлено, что мочевина может быть поглощена корнями и листьями растений без предварительного превращения. Но существует опасность вымывания из почвы мочевины, не прошедшей аммонификацию.

По мере процесса аммонификации мочевины происходит временное локальное подщелачивание почвы из-за гидролиза углекислого аммония. По истечении некоторого времени аммоний подвергается нитрификации, образуя кислоту и двигая реакцию в сторону подкисления:

2NH₃ + 3O₂ → 2HNO₂ + 2H₂O

2HNO₂ + O₂ → 2HNO₃

Таким образом, карбамид является биологически кислым удобрением. Но после усвоения растениями азота из данного удобрения в почве не остается ни кислотных, ни щелочных остатков.

^[2]

Применение на различных типах почв

Карбамид применяется в качестве основного удобрения на всех почвах под различные сельскохозяйственные культуры.^[8]

в зоне достаточного увлажнения и при орошении на сероземах карбамид более эффективен, чем аммиачная селитра. при основном внесении карбамид равнозначен аммиачной селитре.^[5]необходимо при внесении немедленно заделывать карбамид в почву для уменьшения потерь азота.^[1]

Способы внесения

Мочевину применяют до посева и в подкормку.^[2]

В качестве основного удобрения карбамид применяется на всех почвах и под все сельскохозяйственные культуры.

Ранневесенняя подкормка озимых проводится с немедленной заделкой удобрения в почву боронованием в целях сокращения потерь аммиака.

Подкормка овощных и пропашных культур проводится с использованием культиваторов-растениепитателей.

Карбамид считается лучшей формой азотных удобрений для некорневых подкормок растений, поскольку не обжигает листья и способен поглощаться ими в виде целой молекулы, без разложения.^[8]

Уже через 48 часов после опрыскивания карбамидом азот обнаруживается в составе белка растений.^[2]

Карбамид – одно из удобрений, рекомендуемых при фертигации.^[6]

Влияние на сельскохозяйственные культуры

Карбамид – ценное азотное удобрение. Эффективен при применении под различные культуры. По действию на урожай стоит в одном ряду с аммиачной селитрой.^[5]

. Применение мочевины на свекле (все виды) и рапсе до посева может привести к гибели проростков.^[2]. Применение карбамида в качестве некорневой подкормки значительно повышает содержание белка в зерне.^[2]

Получение

Карбамид получают синтезом из аммиака и диоксида углерода (CO₂) при высоком давлении и температуре. Для улучшения физических и химических свойств кристаллическую мочевину гранулируют. Гранулы для уменьшения слеживаемости покрывают тонкой пленкой жировой добавки.^[6]

 

Что такое Ad Blue и для чего нужна технология SCR?

Одним из самых опасных для человека веществ, выбрасываемых в атмосферу при работе автомобильных двигателей является двуокись азота. Причем, чем более форсирован двигатель, тем больше выделяется окислов азота. Откуда берутся окислы азота, ведь в топливе азотистых соединений очень мало? Все очень просто, при высоких температурах с кислородом начинает реагировать тот азот, который содержится в атмосферном воздухе. И если в бензиновом двигателе этот процесс довольно легко контролировать, то в турбодизеле это совсем не просто. На ранних этапах проявления этой проблемы обходились установкой клапана EGR, для выполнения экологических норм ЕВРО 3 этого вполне хватало. С введением более жестких ограничений ЕВРО 4 и выше понадобились более радикальные меры. Инженеры-химики придумали способ борьбы с окислами азота непосредственно в глушителе автомобиля, в его выпускном тракте. В поток отработавших газов впрыскивается водный раствор карбамида, то есть мочевины, мочевина реагирует с окислами азота с образованием чистого азота и воды. Так родился реактив AdBlue, в некоторых странах известный как AUS 32, где 32 обозначает концентрацию мочевины в процентах в водном растворе. Технология мочевинной нейтрализации окислов азота получила название SCR (Selective Catalytic Reduction) — селективное каталитическое восстановление) и используется практически всеми крупными производителями автомобильной и сельскохозяйственной техники. Сам раствор мочевины в воде стал жестко стандартизованным продуктом (DIN 70070 и ISO 22241), который выпускается строго по лицензии. Почему так жестко? Ведь мочевина активно используется как органическое удобрение, а воды вокруг хоть залейся? Обязательное использование именно лицензированного продукта связано с очень жесткими требованиями к чистоте продукта. Дело в том, что расход AdBlue при работе автомобильного двигателя составляет порядка 3-5 % от расхода топлива, стало быть, дозирующая аппаратура очень точная и чувствительная к малейшим загрязнениям.

Незначительные примеси посторонних веществ из самой мочевины или из воды выводит из строя дорогостоящее оборудование. И двигатель при выходе из строя системы SCR работать не будет, так как электроника не позволит его даже завести. Примерно такая же настройка используется и в случае опорожнения бака с мочевиной, автомобиль проедет еще несколько десятков километров с пустым баком, но повторный запуск двигателя электроника заблокирует. Так производители соблюдают экологические нормативы.  Очень капризен реактив AdBlue и к условиям хранения, особенно при повышенных и пониженных температурах. При нарушении температурного режима раствор мочевины теряет свойства, к счастью, не сразу, а за несколько раз. Оптимальный режим хранения не более 36 месяцев при температурах 0-10°С. Срок хранения при температуре выше 25°С сокращается в два раза. После однократного замораживания-размораживания продукт не теряет свои свойства и полностью работоспособен. Установленный на автомобиль бак для AdBlue обычно термостатирован и снабжен автономным подогревателем. Даже при двухсуточной стоянке при температуре -40°С, AdBlue не замерзнет. Дозирующее устройство и блок подачи также снабжены подогревом.

Сегодня, системами мочевинной нейтрализации снабжено большинство дизельных грузовиков и некоторая часть легковой техники, лидерами являются Mercedes Benz, Peugeot, Citroen. На грузовые автомобили ставится специальный нержавеющий бак с голубой пробкой для AdBlue, емкостью 20-30 литров, чего обычно хватает на полную заправку соляркой. У легковых дизельных автомобилей также есть бак для реагента, но меньшей емкости, на пробег от ТО до следующего ТО. Для того чтобы владелец не ошибся с заливкой и не заправил «стеклоомывайку» вместо мочевины, используется специальная горловина с автоматическим замком, а на канистре c AdBlue специальная насадка-шланг. При использовании реагента нужно соблюдать осторожность, так как мочевина вызывает ускоренную коррозию железа алюминия и меди.

Пролитую жидкость нужно как можно быстрее смыть водой и вытереть насухо. Не рекомендуется также контакт с кожей. Сегодня, для сохранения экологичного выхлопа дизельного двигателя у системы SCR нет альтернативы, поэтому жидкость AdBlue будет использоваться в эксплуатации автомобилей еще долго.

Подробнее про AdBlue Liqui Moly: https://liquimoly.ru/item/8835.html

Где купить AdBlue: https://liquimoly.ru/map.html

инструкция по применению, как приготовить

Дефицит азота в растениях приводит к плохому развитию почек, хилым и неразвитым побегам, скудным листьям, раннему сбрасыванию листьев. Исправить положение поможет мочевина. Для чего она нужна и что с ней сделать? О ее применении и обработке сада и огорода мы поговорим далее.

Что такое мочевина?

Это минеральное удобрение с высокой концентрацией азота. Его применяют в качестве основной или дополнительной подкормки для различных культур.

Мочевина является первым органическим соединением, которое получили путем химических реакций из неорганических веществ.

После внесения мочевины, растения хорошо растут и обильно плодоносят. Такие вредители, как долгоносики, тля и медянки пропадают после опрыскивания.

Пурпурная пятнистость отступит от плодовых деревьев и кустарников, если их обрабатывать раствором ранней весной и поздней осенью.

Карбамид и мочевина: это одно и то же или нет?

По сути, это два наименования одного удобрения. В первое время его синтезировали из мочи скота путем выпаривания, полученное вещество назвали мочевиной.

Карбамид – научное название химического соединения, которое производится в настоящее время.

Удобрение представляет собой небольшие гранулы белого цвета, хорошо растворяющиеся в теплой воде.

Карбамид и мочевина — это одно и то же

Состав и свойства препарата

Карбамид – это высококонцентрированное азотное удобрение, в составе которого нет нитратов. Его использование предпочтительнее на стадии развития растений. Если использовать его на этапе образования бутонов, то впоследствии можно потерять в урожае.

Положительные свойства удобрения:

1. Не способен причинить ожоги растениям, при опрыскивании.
2. Увеличивает осенний сбор плодов у садовых и плодово-ягодных культур.
3. Отлично ведет борьбу с паразитами и возбудителями инфекций.
4. За короткое время усваивается растениями.
5. Повышается концентрация азота в растительных клетках, в течение двух суток после опрыскивания.
6. Способен притормозить цветение и снизить риск опадания цветков в заморозки.
7. Увеличивает количество белка в культурах.
8. Практически не вымывается в нижние слои земли.
9. Медленно распадается в грунте.
10. Легко растворяется, не оставляет осадка.

Отрицательные стороны карбамида:

1. Снижает всхожесть семян, если в почве его слишком много.
2. Способен навредить молодым всходам, при неправильном использовании.
3. Хранится при определенных установленных нормах.
4. Плохо сочетается со многими элементами.

Мочевина имеет гранулированный вид

Сочетание с другими удобрениями

Мочевину не рекомендуется смешивать со щелочными удобрениями, так как после химической реакции, выделяется аммиак и азот исчезает.

Если соединить карбамид и порошкообразный суперфосфат, то свойства этих удобрений изменяются. Этого можно избежать, если предварительно к суперфосфату добавить известняк, костную или фосфоритную муку.

Долго хранить можно смесь мочевины и:

• натриевой и калиевой селитры;
• навоз;
• хлористого калия;
• сульфата калия;
• аммиачной селитры.

Перед удобрением садовых и плодово-ягодных растений можно смешивать карбамид и с фосфоритной мукой, суперфосфатом, сульфатом аммония.

Ни в коем случае нельзя соединять мочевину и золу, известковые удобрения, кальциевую селитру.

В сочетании с другими удобрениями мочевина может изменять свои свойства

Инструкция по применению раствора

Разбрасывание гранул карбамида по огороду не даст ожидаемых результатов, так под воздействием воздуха, его соединения распадаются. Максимальная эффективность достигается, если вносить его в почву. Доступ воздуха к углекислому аммонию будет ограничен, в итоге питательные элементы будут попадать к растениям.

Мочевина подходит к использованию на всех видах почв.

У всех растений разные потребности в питательных веществах. Поэтому рекомендуется готовить раствор карбамида для каждой культуры отдельно.

Осенью использовать его можно только на пустом огороде, так как он может навредить многолетним растениям и озимым сортам лука и чеснока. Но специалисты считают нецелесообразным применять его в это время, ввиду того, что карбамид быстро распадается, а часть веществ улетучивается.

Удобрение лучше вносить весной для активного роста и развития растений. Подкормка раствором эффективна во влажную землю. В гранулах он применяется под перекопку и рыхление.

Карбамид вносится весной для лучшего роста растений

Разведение

Чтобы приготовить раствор необходимо развести гранулы 2 литрами воды. Перемешать до полного растворения, затем добавить воды до необходимого объема.

Опрыскивание и обработка огорода

В период роста растений лучше применять опрыскивание мочевиной, которое проводят на восходе или закате солнца, в безветренную погоду.

Плодовые деревья и кустарники опрыскиваются более концентрированным раствором, чем травянистые растения.

Чтобы уничтожить перезимовавших вредителей, нужно обработать деревья до появления почек, когда среднедневная температура установится на отметке +5°С.

В период листопада можно обрызгать деревья, на которых есть инфекционные заболевания, а также их опавшие листья. Это нужно для того, чтобы на будущий год культуры не заболели.

Карбамид можно использовать на любых культурах

Нормы внесения в садоводстве

Для овощных культур, цветов и ягод на 1м² :

• розы, ирисы, каллы, гиацинты, гиппеаструмы – 5-10 гр.;
• огурцы и горох – 6-9 гр.;
• патиссоны, баклажаны и кабачки – 10-12 гр.;
• перец, помидоры, капуста, свекла, картофель, лук и чеснок – 19-23 гр.;
• клубника – 13-20 гр.

Для плодово-ягодных культур на одно растение:

• молодые груши и яблони – 150 гр.;
• плодоносящие груши и яблони – 200-250 гр.;
• молодые сливы, вишни, ягодные кустарники – 70 гр.;
• плодоносящие сливы и вишни – 120-140 гр.

Карбамид является очень эффективным удобрением в садоводстве. Им можно подкармливать растения и почву, уничтожать вредителей, защищать культуры от заболеваний. Для получения наилучших результатов нужно разводить 5-ти процентный раствор, согласно инструкции, а также стараться не разбрасывать его по садовому участку. Следует помнить, что для растений он полезен весной в период набора зеленой массы, а для профилактики болезней и вредителей – после первого осеннего листопада.

Удобрение карбамид мочевина, применение, инструкция, рекомендации

Без правильного внесения удобрений в сельском хозяйстве и на огороде сложно добиваться высоких урожаев культур. Они достаточно эффективны при правильном подходе и следовании инструкциям дозировки и срокам внесения.

Комплексные подкормки

Применение разнообразных комплексным подкормкам, стимуляторам роста культуры быстрее вырастают, формируют красивую, пышную листву, крепкую корневую систему, меньше подвергаются болезням. В этом деле главное — не переусердствовать и точно знать, какие удобрения кому подходят, чтобы потом не было неприятных сюрпризов.  

Карбамид мочевина что такое?

Как удобрение карбамид широко используется для активации роста, получения обильных урожаев, поддержания растений в презентабельном состоянии. Азот необходим как овощным, так и декоративным культурам. Он присутствует в протеине и способствует быстрому росту. При недостатке азота растения дают мало побегов, ветки и листья становятся тонкими, маленькими, салатового или желтоватого цвета.

Цветочные почки могут опадать, плоды не завязываться. Что такое мочевина? Как удобрение она используется для частного применения. Карбамид очень концентрирован, в его составе содержится около 45% азота. 

Это универсальное удобрение, подходящие для всех видов растений. На вид это прозрачные или белые гранулированные шарики, прекрасно растворяющиеся в воде и не имеющие запаха. У карбамида может повыситься гигроскопичность при повышенной влажности воздуха. Используется в качестве подкормки для сельскохозяйственных растений в нейтральных почвах мочевина (удобрение).

мочевина инструкция к применению

Карбамид может использоваться на всех видах почв, даже переувлажненных, потому как он отлично закрепляется грунтом и не так вымывается осадками, как, например, аммиачная селитра. Мочевина применяется как в качестве подкормки, так и основного удобрения. Для овощных культур возможно внесение карбамида перед посадкой, а также подкормка в вегетационный период в дозе 5-10 г на 1 м2. До цветения надо полить раствором 50 г на 10 л воды, примерный его расход – 3 л/100 м2. Для декоративных и плодово-ягодных кустарников и деревьев возможна подкормка мочевиной сразу после цветения и повторно примерно через месяц раствором 30 г/10 л воды.

Способ применения мочевины Каждое удобрение имеет свои особенности, которые нужно учитывать, прежде чем использовать его по назначению. Углекислый аммоний на воздухе очень быстро разлагается, из этого следует – поверхностное применение мочевины малоэффективно. Это выброшенные на ветер деньги, потому как растение не получит нужных ему веществ. Агротехники рекомендуют использовать карбамид в условиях защищенного грунта. После внесения удобрения его нужно сразу же заделывать в почву, только так можно предотвратить потери газообразного аммиака. Нужно знать, что такое мочевина, как удобрение она быстро вымывается осадками, поэтому эффективнее всего ее вносить под корень растения в виде раствора. Защита кустов и деревьев Карбамид используется не только в качестве подкормки, но и как средство от вредителей. 

исползовать раствор мочевины для борьбы с такими зимующими насекомыми, как долгоносики, тля, медяницы следует начинать весной.

Процедуру нужно сделать до набухания почек. Приготовить средство для борьбы с вредителями очень просто, для этого следует в 10 л воды разбавить 0,5 л концентрированного раствора препарата. Мочевина также защищает растения от пурпуровой пятнистости и парши, опрыскивание при этом проводится осенью, когда только начинают опадать листья. Обрабатывать нужно всю листву — как упавшую, так и ту, что осталась на кустах и деревьях.

Раствор готовится такой же, как и для уничтожения вредителей. Подкормка комнатных растений Абсолютно все растения нуждаются в подкормках, но нужно хорошенько подумать, перед тем как использовать для домашних зеленых питомцев такую добавку, как мочевина (удобрение). Применение для комнатных растений азота необходимо, поскольку он позволяет создать пышную крону, ускорить рост, предотвратить пожелтение и опадание листьев. Карбамид очень концентрирован, поэтому к его использованию следует подходить с большой осторожностью. Если прогадать с дозировкой, то можно лишиться своего любимца или же испортить ему внешний вид. Нужно понимать, что такое мочевина. Как удобрение она подходит для создания пышной, сочной листвы. А для красивоцветущих растений азот не столь полезен, поскольку его переизбыток замедляет процесс образования бутонов. Луковичные (гиацинты, гиппеаструмы), древесные (апельсины, фикусы, лимоны), корневищные (ирисы, каллы) с первых дней жизни нуждаются в азотных подкормках, поэтому их можно удобрять карбамидом безо всяких опасений. А вот клубневые (каладиум, глориозу) подкармливать нужно уже после появления первых листиков. Мочевина как удобрение для комнатных растений используется в виде раствора.

Средство готовится из расчета 20 г на 10 л воды, его хватает на 10 м2. Подкормки для овощных и плодово-ягодных культур Карбамид подходит для удобрения практически всех типов растений, особенно он эффективен в период вегетативного роста. Однако следует помнить, что для разных культур необходимо в различной степени концентрированное, такое как мочевина, удобрение.

Применение для чеснока, лука, капусты, картофеля, перца и томатов возможно при концентрации около 20 г карбамида на м2. Под горох и огурцы вносится удобрение в расчете 7 г/м2. Томаты, землянику, капусту и огурцы можно периодически подкармливать раствором 25г/л, а уменьшенной в два раза концентрацией карбамида до распускания почек стоит полить крыжовники, смородину и другие плодово-ягодные кусты. Мочевина способствует формированию красивой кроны, поэтому рекомендуется ее вносить под яблони (230-250 г), сливы и вишни (110-150 г). Карбамид можно рассыпать по лунке, а затем ее хорошо залить водой.

Допускается и подкормка раствором, но исключать полив нельзя. Если сравнивать мочевину с другими азотными удобрениями, например аммиачной селитрой, то она во многом выигрывает: максимально ускоряет рост, подходит для внекорневых подкормок и при нормальной концентрации совершенно не обжигает листья. Правильное использование карбамида не только улучшает внешний вид растений, но и способствует получению богатого урожая.

Карбамид – гранулированное удобрение | База знаний

Карбамид – гранулированное удобрение

Карбамид (Мочевина) – это гранулированное удобрение, которое отличается высокой эффективностью и содержанием питательного легкоусвояемого элемента – азота (46%), который необходим для развития растений. Это удобрение является самым концентрированным по содержанию азота среди азотных удобрений. В течение 2-3 дней мочевина превращается в углекислый аммоний под воздействием ферментов, вырабатываемых почвенными бактериями. Углекислый аммоний имеет свойство разлагаться на воздухе, и некоторая его часть превращается в газообразный аммиак, поэтому не рекомендуется вносить мочевину без заделки в почву, так как теряется часть азота. На щелочных и нейтральных почвах потери азота особенно возрастают.

• Карбамид может использоваться на всех видах почвы. На почвах с повышенной влажностью вместо аммиачной селитры лучше применять мочевину, так как содержащийся в ней азот хорошо фиксируется почвой и не вымывается дождями. Мочевину применяют в качестве подкормки и как основное удобрение с заделкой в почву, предотвращая тем самым образование газообразного аммиака.

Норма внесения в почву следующая:

1. — 20-25 г/м² — для свеклы, капусты, лука-порея, томатов, картофеля, перца.
2. — 5-8 г/м² — норма для гороха и огурцов.

• Для подкормки томатов, земляники, огурцов и капусты используют на 1 литр воды 20-30г. На одно растение уходит 1 литр раствора. Смородину подкармливают до распускания почек, разводя 20г карбамида на 10 литров воды, крыжовник – 10г на 10 литров воды, а во время роста побегов — на 10 литров воды разводят 10г вещества. Если проводят посевные работы в рядки, то в лунку добавляют и перемешивают с землей 2,5-4г удобрений. Состав: содержание азота не менее 46,2%.
• На кустарники и деревья мочевину вносят по проекции кроны. Под плодоносящую яблоню рекомендуется вносить 200-250г карбамида, и 120-140г под сливу и вишню. Карбамид можно вносить на поверхность почвы, но затем требуется обильный полив водой. Полив обязателен даже если мочевина вносилась в растворенном виде.
• В подкисленную мочевиной почву вносят известняк для нейтрализации повышенного уровня кислотности. На 1кг карбамида требуется 0,8 измельченного известняка. В почву, площадь которой равна 10м, вносят 100-150г мочевины. При обработке добавляют 2/3 удобрений, а 1/3 часть используют в качестве подкормки по мере роста растения.
• Для приготовления жидкого раствора потребуется 50-70г мочевины на 10 литров воды. Такого количества достаточно для поливки под корень на 50 растений огурцов и 20 растений томата.
• При некорневом питании расходуется 100г карбамида на 10 литров воды. Этого хватает на 100м посадок или посева.

Карбамид смешивают с простым суперфосфатом, подвергая его нейтрализации. Сначала в суперфосфат добавляют измельченный мел или известняк, а потом удобрение в соотношении 100г известняка или мела на 1кг суперфосфата.

Если сравнивать мочевину и аммиачную селитру, то мочевина более пригодна для применения при внекорневых подкормках растений, так как меньше обжигает листья.

Внекорневую подкормку рекомендовано проводить при проявлении признаков азотного недостатка у растений. Такая необходимость может возникнуть в период завязей ягод или плодов, а так же после их осыпания. Раствор для внекорневой подкормки разводят из расчета на 10 литров воды 30-40г карбамида и опрыскивают с помощью ручного опрыскивателя утром и вечером.

Если под кустарники и деревья использовали органические удобрения, то количество внесенного карбамида уменьшается на 1/3 или половину. Следует снижать дозы мочевины при подкормке молодых и еще не плодоносящих растений.

Не рекомендуется смешивание карбамида с известью, мелом, суперфосфатом и доломитом. Мочевину также используют как средство борьбы против вредителей.

С приходом весны начинается борьба с вредителями, которые находятся на стадии зимовки: медяницы, яблоневый цветоед, долгоносики, тля. Применяют концентрированный раствор в соотношении 500г на 10 литров воды. Такую обработку используют в тех случаях, когда в прошлом году было много вредных насекомых.

Мочевину используют для защиты от болезней: пурпуровая пятнистость, монилиальный ожог, парша.

В том случае, если листья яблони были поражены паршой, то с наступлением осеннего листопада проводят опрыскивание дерева 5% раствором карбамида. Мочевина, попадая внутрь листа, снижает возможность образования плодового тела, которое является причиной первичного заражения в весенний период. Опавшие осенью листья яблони, также могут подвергнуться обработке 7% раствором мочевины. Расход удобрения на 10 м² составляет 2,5 литра раствора. Заменой или дополнением карбамида может стать калий хлористый или аммиачная селитра, но здесь следует быть очень аккуратными, чтобы эти удобрения не попали на кору или почки.

Обрабатывая стволы и ветви деревьев, следует использовать раствор мочевины небольшой концентрации и повторять эту процедуру можно через 10 суток до 3-4 раз. Прежде всего, это не только борьба с болезнями растений, но и неплохая внекорневая подкормка.

Полезный совет от Азот трейд:

Казалось бы, очень удобно разбрасывать удобрение по снегу или в дождь. После того, как удобрение раствориться во влажной среде, оно перемещается в почву вместе с тающим снегом, но в результате этого, удобрение просто вымывается и не доходит до глубоких слоев почвы. Лучше всего локальное применение. Следует приготовить раствор, и в сухую погоду полить лейкой близко к корневой системе. Некоторые даже выкапывают ямку, которую потом выравнивают. Результат не заставит себя долго ждать. Растение получит комфортные условия в почве, а садовод сбережет деньги, так как удобрение не уплывет.

Насколько безопасны ядохимикаты в борьбе с вредителями на дачном участке?

Зимой садоводов и огородников огорчают дачные воры, а в сезон ничуть не меньше неприятностей доставляют многочисленные вредители, которые буквально крадут урожай. Ученые придумали массу надёжных методов борьбы с мелкими вредителями. Но очень немногие успешно всё это применяют. Одни боятся химии, другим в голову не приходит читать инструкции. От этого — отравления и другие проблемы.

Репортаж Виктора Аверина.

Летом прошлого года под Воронежем в посёлке Комсомольский колхозный самолёт сбился с курса. Метил ядохимикатами в поля гороха, а оросил огороды местных жителей. Анна Ильинична помнит, как на её глазах погибали грядки с овощами. Как все труды пошли насмарку.

Анна Костомаха, местная жительница: «Огурцы — сразу плети сварились. Тыква, картошка — всё почернело. Капуста тоже вся почернела. Листики все почернели и всё».

Яблоня, чьи ветви ломились от плодов, и на которую не могла нарадоваться пенсионерка, в тот же день осыпалась. Есть такие яблоки не решился никто. Анна Ильинична собрала их граблями в одну кучу. Теперь это своеобразное захоронение ядовитых отходов.

В этом году местные жители надеются на урожай. Химикаты за несколько месяцев разложились в почве и не представляют угрозы ни для растений, ни для людей. В этом заверил всех агроном.

Но в чём действительно уверены жители посёлка, так это в том, что химикаты для обработки своих посевов они возьмут в руки теперь нескоро.

Марина Попова из Краснодарского края химию на своём огороде не использует принципиально. Исключение — карбамид, азотное удобрение, более известное в народе под именем мочевина. Но в остальных случаях обходится дедовскими методами. Например, шелуха от семян подсолнечника идёт на борьбу с сорняками.

Ростовский пенсионер Валентин Пудов на своих четырёх сотках чего только не выращивает. И помидоры, и огурцы, и перец, и даже виноград. Никогда ничем свои растения не опрыскивал и химические удобрения не использовал. Секрет отличного урожая — это навоз, считает садовод.

Этим добром его снабжают куры и нутрии, которых он сам и разводит. Природное удобрение гарантирует экологически чистый урожай. А про химикаты Валентин Григорьевич и слышать не хочет.

Все страхи садоводов и огородников — от незнания, говорят учёные. В лабораториях Тимирязевской академии студенты и аспиранты изучают влияние ядохимикатов на почву и растения.

Вредители и сорняки могут погубить весь урожай. А правильное и, самое главное, умеренное применение химикатов позволит его сохранить — утверждают биологи. И всё это без последствий для здоровья человека.

Николай Третьяков, доктор биологических наук: «Все разрешённые и продающиеся в магазинах препараты не нанесут никакого заметного вреда человеку. Они по токсичности ненамного превышают те препараты, которые, например, многие сейчас используют дома для борьбы с комарами.

Светлана Семёновна — огородница со стажем. Но всегда старается шагать в ногу со временем. Она, как и большинство садоводов и огородников, за экологичность и безопасность. Но каждую весну надевает резиновые перчатки, защитную маску и выходит на грядки, чтобы распылять гербициды.

Если всё сделать правильно и вовремя, не придётся вручную сражаться с сорняками, а овощи не успеют впитать в себя химикаты.

Светлана Андрияшина, огородница: «Желательно обрабатывать до того момента, пока не появляются ещё плоды. Тогда этот ядохимикат не оказывает отрицательного воздействия на урожай, и его можно свободно употреблять в пищу».

Главное, считает дачница, соблюдать меры безопасности. Не распылять химикаты в ветреную погоду, использовать защитную одежду. Светлана Семёновна всегда осторожна.

То, что несколько минут назад она опрыскивала свой газон ядами, не почуяли даже собаки, живущие в дачном посёлке. Значит, говорит женщина, всё сделано правильно.

Как избавиться от вредителей сада и огорода без ущерба для собственного здоровья, расскажет доктор сельскохозяйственных наук Ирина Исаева. Все ли ядохимикаты так вредны для человека, или есть какие-то современные разработки, более безопасные?

Гость: Конечно, они не являются безопасными, если от них вредители погибают. Но это то, что дает возможность нам их использовать со строгим соблюдением правил, которые надо обязательно прочитать.

Ведущий: Существуют ли какие-то народные средства борьбы с вредителями?

Гость: Дело в том, что они менее эффективные, чем химические средства, и более трудоемкие в использовании. Я, например, в своем саду использую всегда для борьбы против тли: хозяйственное мыло стругается в теплую воду, добавляется туда зола. Тампоном из ватки или из какой-то мягкой ткани полученным раствором смывается вся тля.

Ведущий: Если мы все-таки применяем химию, может ли она каким-то образом попасть в наш урожай, в плоды, в овощи?

Гость: Основное условие, что химия применяется четко по тем фенофазам, то есть, по уровню развития растений, которые указаны в инструкции к тому или иному препарату, который вы собираетесь применить. Самое главная фенофаза, в которую надо опрыскивать, это «зеленый конус», когда почка набухла и из нее появились первые листочки.

Ведущий: В последней декаде апреля что уже можно и нужно сделать для защиты будущего урожая?

Гость: Нынешний апрель холодный. Я, может быть, скажу то, что мы должны были бы делать в самом начале апреля. Например, земляника: ее нужно обработать граблями, вытащить все старые листья и полить из лейки раствором марганцовки. У многих дачников смородина заражена клещиком. Если вы подойдете к кустам, то увидите круглые раздутые почки — их надо выщипать. Если их много, может быть, отдельные ветки вырезать.

Подойдите к крыжовнику и смородине, и если еще не набухли почки, возьмите горячего кипятка примерно в 70 градусов, быстрым движением полейте кусты. Одна лейка на два-три куста. Только делайте это очень быстро, чтобы не обжечь.

Ведущий: С плодовыми деревьями, что делать?

Гость: С плодовыми деревьями очень рекомендую провести опрыскивание против парши медным купоросом. Все написано в инструкции — все дозы.

Хорошо провести опрыскивание мочевиной, пятипроцентным раствором. Потому что мочевина, это одновременно и удобрение.

Листья обязательно выгрести в этом году, при этом не надо их сжигать. Полейте их тоже мочевиной, присыпьте землей, и будет хороший компост.

Осложнить жизнь всяческим паразитам можно не только ядами. Деревья и кустарники нельзя сажать слишком густо. Ежегодная обрезка обязательна.

Очень полезно иметь в саду пару кустиков бузины. Это растение выделяет защитные вещества.

Любая химическая отрава применяется в крайнем случае за полмесяца до созревания урожая. Но лучше всего — именно весной, когда только-только показались первые листочки.

В эти дни будет нелишним расстелить под плодовыми деревьями и ягодными кустарниками круги из рубероида. Это остановит вредителей, зимовавших в земле.

Яблони и груши важно опрыскать медным купоросом или мочевиной против парши. Причём брызгать надо и на крону, и на землю вокруг ствола.

Землянику избавьте от старых листьев и полейте тёплым раствором марганцовки. Со смородины оборвите круглые почки и обдайте растения горячей водой.

Карбамид

Карбамид – H

₂NCONH₂ – амид карбаминовой кислоты или диамид угольной ки­слоты. Это белые кристаллы, растворимые в полярных растворителях (воде, этаноле, жидком аммиаке).

Температура плавления 132,7°C, плотность 1,33•103 кг/м³.

Выпускают карбамид двух марок: А — для использования в химической промышленности и животноводстве, и Б – для использования в сельском хозяйстве.

Применение мочевины:

• основное сельскохозяйственное применение — азотное удобрение (содержание азота 46 %). В этом качестве выпускается в устойчивом к слёживанию гранулированном виде.
• важным промышленным применением мочевины является синтез мочевино-альдегидных (в первую очередь мочевино-формальдегидных) смол, широко использующихся в качестве адгезивов в производстве древесно-волокнистых плит (ДВП) и мебельном производстве.
• производные мочевины — эффективные гербициды. 
• применяется для очистки дымовых газов тепловых электростанций, котельных, мусоросжигательных заводов, двигателей внутреннего сгорания и т. п. от оксидов азота.
• карбамид зарегистрирован в качестве пищевой добавки E927b.

Еще одним перспективным направлением использования карбамида является производство 32,5%-го раствора карбамида, используемого для обработки выхлопных газов дизельных двигателей. Применение данного раствора позволяет добиться соответствия состава выхлопных выбросов нормам Euro-4 и Euro-5. В этом случае более предпочтительным является применение приллированного карбамида ввиду его физических свойств.

Мы предлагаем технологию, инжиниринг, проверенные временем энергосберегающие, инвестиционно эффективные и экологически безопасные решения:

• разработка новых технологических и конструктивных решений в производстве карбамида;
• проектирование новых производств карбамида;
• реконструкция установок карбамида с увеличением мощности;
• проектирование и поставка установок для получения раствора карбамида для очистки автомобильных выхлопов;
• проектирование и поставка установок для получения сложных гранулированных удобрений на основе карбамида, гранулированной аммиачной, кальциевой и магниевой селитры, а также антигололедного реагента марки НКММ.

Раствор мочевины | Яра Интернэшнл

По соображениям безопасности мочевина часто является выбором для систем СНКВ, хотя она менее эффективна, чем аммиак.

Мочевина — важное сырье для химической промышленности. Он широко используется в системах контроля NOx для снижения выбросов оксидов азота. Yara является ведущим производителем карбамида и на протяжении многих лет поставляет карбамид своим клиентам, в том числе для сокращения выбросов NOx.

Почему выбирают мочевину в качестве реагента?

Мочевина менее эффективна, чем аммиак, поскольку ее необходимо преобразовать в аммиак перед процессом восстановления NOx.

В качестве реагента Мочевина

• Представляет меньше рисков на рабочем месте и не требует специальной подготовки, в отличие от аммиака.
• Неопасен, является стабильным, нелетучим, невзрывоопасным и негорючим.
• Можно безопасно транспортировать, хранить и использовать без специального обучения.

Использование мочевины в качестве реагента для контроля NOx имеет недостатки

• Мочевина может привести к дополнительным выбросам закиси азота или окиси углерода (ядовитые газы).
• Менее эффективен, чем аммиак.
• Существует повышенная вероятность загрязнения и коррозии оборудования после точки впрыска.
• Утечки раствора мочевины приводят к осаждению белой соли, которая придает вашему оборудованию вид старения.
• При смешивании с жесткой водой для режима deNOx возможно образование накипи и засорения.
• Растворы мочевины должны быть обеспечены достаточным количеством тепла, чтобы избежать замерзания. Температура замерзания зависит от концентрации, 40% начинают замерзать при 0 ° C.

Почему именно Yara поставляет мочевину?

Yara — один из крупнейших производителей карбамида в мире, предлагающий уникальные резервные запасы карбамида. Наши специалисты по контролю NOx могут предоставить вам техническую поддержку и советы, чтобы убедиться, что ваша система контроля NOx мочевины SNCR является рентабельной и отвечает всем необходимым требованиям.

Yara поставляет реагент по вашему выбору из нашей уникальной сети заводов, предлагая постоянную поддержку в поставках. Мы поставляем либо твердую мочевину, обычно для разбавления на месте, либо раствор мочевины в различных концентрациях.

Мочевина / Раствор мочевины может транспортироваться по

• Грузовик (сплошная упаковка) / Силосный грузовик (навал)
• Тара (навалом и навалом)
• Вагон (навалом и навалом)
• Судно / баржа (наливом и наливом)

Мочевина — Tanner Industries

TANNER INDUSTRIES МОЧЕВИНА LIQUOR

Наша качественная продукция производится для удовлетворения потребностей промышленного рынка мочевины.Наши продукты могут быть использованы для снижения выбросов NOx, пластмасс, кормов для животных, чистящих средств и фармацевтики. Мы можем поставить 40%, 50% и 70% спиртных напитков.

Наш материал соответствует или превосходит строгие требования к качеству рынка восстановления NOx, которые используют селективное каталитическое восстановление (SCR) или селективное некаталитическое восстановление (SNCR). Наше качество также позволяет нашим клиентам из промышленной и химической промышленности удовлетворять их строгие требования к качеству.

Поскольку мочевина не является опасным материалом, она соответствует потребностям определенных клиентов, сообществ и местных нормативных актов, которые могут иметь отношение к более опасным материалам.Доставка раствора мочевины осуществляется в утвержденных автоцистернах с изоляцией из нержавеющей стали, а для хранения обычно требуется подогрев резервуара и изоляция для поддержания температуры раствора мочевины выше температуры высаливания. Температура замерзания жидкой мочевины зависит от концентрации.

Tanner Industries владеет и управляет предприятиями по распределению аммиака и карбамида на большей части территории Соединенных Штатов. Мы стремимся к высочайшему качеству продукции и услуг в отрасли и уделяем особое внимание безопасности.

Свойства
Формула : Ch5N2O + h3O
Синонимы : Раствор мочевины; Мочевина корма для крупного рогатого скота
STCC : 2818146
Предполагаемое использование продукта : Удобрение; Корма для животных; Азотный раствор для Системы управления SCR NOx; Промышленное применение.
Физическое состояние : Жидкость
Внешний вид : Бесцветный
Запах : Легкий запах аммиака (резкий)
pH : 7 — 10 (в зависимости от свободного аммиака)
Точка плавления : 40% раствор мочевины выходит из солей при 32 ° F; 50% раствор мочевины солится при 62 ° F; 70% раствор мочевины высаливается 135 ° F
Точка замерзания : нет данных
Растворимость : вода: 100%

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.

---

Настройка вашего браузера для приема файлов cookie

Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее частые причины:

• В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки своего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
• Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались.Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файлы cookie.
• Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
• Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г., браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере.
• Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie.Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

---

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Чтобы предоставить доступ без файлов cookie потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.

---

Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файле cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.

цистерн мочевины на дизельных грузовиках — это закон США с 2010 года

?

ФОТО: Прототип дизельного грузовика с баком мочевины и блоком SCR.посмотреть еще

Кредит: DaimlerChrysler Power Systems

Резервуары для мочевины будут стандартным оборудованием для большинства новых дизельных грузовиков, автобусов, легковых автомобилей и внедорожников, производимых в США после 1 января 2010 года. Автомобильный карбамид будет вводиться в выхлопные газы автомобилей. для «очистки» оксида азота (NOx) от выхлопных газов дизельного двигателя.

NOx, основной загрязнитель воздуха, способствует образованию смога, который вызывает астму, респираторные и сердечные заболевания.

Система SCR мочевины или «селективное каталитическое восстановление на основе мочевины» — единственная доступная технология, которая может удалить достаточно NOx из выхлопных газов дизельного топлива, чтобы соответствовать новым строгим ограничениям, установленным Агентством по охране окружающей среды США (EPA), — говорит Гленн Кедзи. Советник по охране окружающей среды Американских ассоциаций грузчиков.

Автомобильная мочевина, называемая «жидкостью для выхлопных газов дизельных двигателей» (DEF) в США и AdBlue, торговой маркой в ​​Европе, снижает выбросы NOx на целых 90% сама по себе и может довести NOx до почти нулевого уровня при использовании в сочетании. с технологией дизельного сажевого фильтра, — говорит Ким Доран, представитель недавно созданной Североамериканской группы заинтересованных сторон SCR и редактор FactsAboutSCR.com, веб-сайт, посвященный новостям SCR.

DEF и AdBlue представляют собой водный раствор мочевины 32 (AUS 32), прозрачный 32,5% -ный азотный раствор мочевины высокой чистоты в деминерализованной воде. Производители заявляют, что с растворами мочевины безопасно обращаться. AdBlue можно купить оптом в Европе или литрами на некоторых СТО.

Появление DEF и AdBlue создает новый спрос на мочевину, наиболее широко используемое в мире азотное удобрение. Некоторые обеспокоены тем, что новое использование приведет к росту цен на удобрения.Другие думают, что это будет стимулом для производителей увеличить производство и, следовательно, снизить цены.

«Мы знаем о перенаправлении традиционных продовольственных культур, таких как кукуруза или сахарный тростник, на биотопливо, такое как этанол, — но теперь мочевина, основной ресурс для производства продуктов питания, также используется в качестве топлива», — говорит д-р Амит Рой, президент и генеральный директор Международный центр плодородия почв и сельскохозяйственного развития (IFDC).

«По иронии судьбы, очистка окружающей среды является ключевой причиной использования обеих технологий.«

Производители, внедряющие технологию СКВ мочевины

Более полумиллиона дизельных грузовиков в Европе в настоящее время используют СКВ мочевины, и, по данным Integer Research, лондонской фирмы по анализу рынка, специализирующейся на СКВ мочевины, парк увеличивается примерно на 25 000 грузовиков в месяц.

Доран говорит, что технология SCR внедряется производителями легковых автомобилей и легких грузовиков, обслуживающими Соединенные Штаты, включая Audi, BMW, Hyundai, Jeep, Kia, MiniCooper и Volkswagen.В конце 2008 года Mercedes-Benz представит три новых внедорожника с дизельным двигателем, в которых используется технология СКВ мочевины. СКВ мочевины также используется в Японии и Сингапуре и вскоре будет использоваться в Китае.

К производителям коммерческих грузовых автомобилей, использующим SCR, относятся Freightliner, Kenworth, Mack, Peterbilt и Volvo. Ведущие производители двигателей, использующие SCR, включают Cummins и Detroit Diesel Corp.

.

Будущий спрос

Расход раствора мочевины составляет около 3% от расхода дизельного топлива. Дизельные грузовики в среднем составляют 6,5 миль на галлон (2,8 км / литр). Среднестатистическому грузовику с дизельным двигателем необходимо будет заправлять 20-галлонный бак DEF каждые 4000–6000 миль (76 литров каждые 6400–9600 км).

Мочевина для сокращения выбросов NOx в настоящее время потребляет от 0,3 до 0,4 миллиона метрических тонн (мт) мочевины в Западной Европе, — говорит Стивен Цварт, менеджер по лицензированию голландской компании Stamicarbon, крупнейшего в мире лицензиара технологии производства карбамида. Через 10 лет нынешний парк грузовых автомобилей в Западной Европе будет заменен, а использование карбамида составит от 3 до 4 миллионов тонн.

Будущие потребности в мочевине, генерируемые технологией SCR в Соединенных Штатах, были рассчитаны доктором Карлосом Баананте, экономистом по сельскому хозяйству IFDC.

В 2003 году 213 миллиардов литров дизельного топлива было использовано для транспортировки в Европе и 146 миллиардов литров в Соединенных Штатах, согласно EarthTrends, инициативе Института мировых ресурсов (http: // earthtrends. wri. org / индекс. php ).

Baanante предполагает, что только 7% дизельных грузовиков в США будут использовать СКВ карбамида в 2010 году — новые грузовики, приобретенные в этом году.

«Потребление мочевины в США для транспортировки, вероятно, будет эквивалентно примерно 210 000 тонн удобрений мочевины в 2010 году, но в 2011 году вырастет как минимум вдвое, а затем будет быстро расти по мере замены старых грузовиков новыми моделями с цистернами для мочевины. «- говорит Баананте.

По оценкам, литр раствора весит около 1 кг, а удобрение на основе мочевины содержит 46% азота, объясняет Баананте. Таким образом, 1 кг раствора мочевины потребляет азот, необходимый для производства 0.7065 кг карбамидных удобрений. Коэффициент преобразования 0,7065 используется для расчета расхода раствора мочевины в тоннах эквивалента карбамида и удобрений.

«Более 90% мирового производства карбамида предназначено для удобрений, но новые потребности в СКВ мочевины могут это изменить», — говорит Баананте. Мочевина также используется в кормах для животных, производстве пластмасс и клея, в борьбе с обледенением шоссе, в засевах облаков, чтобы вызвать дождь, и в средствах для отбеливания зубов.

Новые строгие правила по выбросам выхлопных газов EPA

Кедзи говорит, что дизельные автомобили, произведенные в США в 2010 году, могут выделять не более 0.2 грамма NOx на каждую тормозную мощность в час — на 90% меньше, чем текущие выбросы. Новые правила EPA не будут применяться к автомобилям, произведенным до 2010 года.

Тракторы, бульдозеры и другие внедорожные транспортные средства должны соответствовать новым стандартам EPA к 2015 году. В США расписание судов и локомотивных двигателей еще не установлено.

«Некоторые автотранспортные агентства сейчас покупают новые грузовики, которые должны были быть заменены после 2010 года, чтобы избежать расходов на резервуары для карбамида, а также на покупку и транспортировку карбамида», — говорит Кедзи.

Но Том Альбрехт, аналитик по транспортному капиталу в Stephens Inc. в Вирджинии, США, считает, что большинство корпоративных перевозчиков — основных покупателей тяжелых грузовиков — продолжат нормальные циклы закупок, поскольку следующий крайний срок выбросов EPA приближается к 2010 году. К такому выводу Альбрехт пришел после опроса 88 перевозчиков об их планах будущих покупок.

Новые потребности могут повлиять на мировой рынок удобрений

Кейт Стоукс, владелец Stokes Engineering и консультант IFDC по производству мочевины, говорит: «Мочевина для снижения выбросов NOx создаст новый спрос, который может привести к росту цен на удобрения — точно так же, как это произошло с производством этанола.«

Но Доран из SCR Stakeholder говорит: «Ожидается, что спрос на этот автомобильный карбамид не превысит 5% мирового производства. Новое использование карбамида для контроля выбросов транспортных средств может привести к увеличению инвестиций и расширению мировых мощностей по производству карбамида. »

Как работают системы SCR мочевины

Мочевина SCR очищает выхлоп после сгорания. Раствор мочевины хранится в отдельном резервуаре для хранения и впрыскивается в виде мелкодисперсного тумана в горячие выхлопные газы.Тепло превращает мочевину в аммиак — реальный агент, снижающий выбросы NOx. Через каталитический нейтрализатор аммиак расщепляет NOx на безвредный газообразный азот (N) и водяной пар. Выхлоп больше не является загрязнителем; атмосфера составляет около 80% газообразного азота.

Билл Херц, вице-президент по научным программам Института удобрений, базирующегося в Вашингтоне, округ Колумбия, говорит: «Вы много слышите о вредном воздействии удобрений на экосистемы, но мало о положительной роли мочевины в удалении загрязняющих веществ.«

Доран говорит: «Поскольку технологии SCR снижают выбросы NOx почти до нуля, двигатели можно настраивать на максимальную топливную экономичность». Результатом является экономия топлива на 3% 𔃃% и снижение выбросов углекислого газа.

«Выхлоп из выхлопной трубы автомобиля с системой SCR может быть чище, чем воздух вокруг него», — добавляет Доран.

Фактически, по данным Daimler Trucks, эффективность двигателя, достигнутая с помощью технологии SCR в Европе, позволила клиентам сэкономить более 280 миллионов литров дизельного топлива и почти полмиллиарда долларов на топливных расходах.В то же время в окружающую среду было сброшено около 800 000 метрических тонн углекислого газа.

Проблемы дальнобойщика

«Мы обеспокоены тем, что недостаточно знаем о новой технологии карбамида», — говорит Адам Коллум, менеджер и совладелец Hellums Trucking Co. из Денниса, штат Миссисипи, США.

«Новый большегрузный дизельный грузовик сейчас стоит около 100 000 долларов. Добавление системы SCR мочевины увеличит стоимость на 10 000 долларов. Насколько дороже будет стоить раствор мочевины, который мы сжигаем? Как насчет технического обслуживания? Вызовет ли мочевина коррозию?»

Доран говорит: «Мочевина может вызывать коррозию алюминия.Системы SCR в транспортных средствах и дозаторы DEF были разработаны с учетом этого, и DEF всегда хранится в соответствующих контейнерах ».

Технология BlueTec в Европе

Новые дизельные внедорожники, поставляемые Daimler в Европе в США, называются моделями BlueTec, потому что они оснащены системой впрыска BlueTec SCR — технологией, которую Mercedes-Benz уже много лет применяет в грузовиках и автобусах в Европе. Для этих моделей мочевина будет поставляться в картриджах, которые будут заменены во время обычного обслуживания.

Detroit Diesel Corp., торговая марка Daimler Trucks North America, объявила, что будет использовать технологию BlueTec на всех будущих грузовиках.

Mercedes-Benz E320 BlueTec получил награду World Green Car of the Year 2007 отчасти за то, что «проложил путь для сверхчистых дизельных технологий во всем мире». Технология контроля выбросов дизельных двигателей BlueTec была признана лучшей новой технологией 2007 года Ассоциацией автомобильных журналистов Канады.

Планирование будущего

Североамериканская группа заинтересованных сторон SCR встретилась для дальнейшего планирования развития инфраструктуры распределения и розничной торговли для обеспечения доступности DEF в США в августе в Дирборне, штат Мичиган.В число заинтересованных сторон входят представители почти 200 организаций, включая производителей дизельных транспортных средств, текущих и потенциальных производителей DEF, дистрибьюторов и розничных продавцов топлива и оборудования, а также Агентство по охране окружающей среды США и Министерство энергетики, согласно сообщению для заинтересованных сторон SCR от 11 августа.

Часть работы Группы заинтересованных сторон SCR включает разработку локатора веб-сайтов для DEF, аналогичного тому, который используется для AdBlue в Европе.

В Европе цены на AdBlue почти удвоились с середины 2007 года, и производителям трудно компенсировать рост затрат на мочевину, сообщает Today’s Trucking 18 июля 2008 года со ссылкой на Integer Research.«Добавьте тот факт, что производители получают большую прибыль от мочевины, когда она продается в качестве удобрения, и неудивительно, что цены выросли», — говорится в отчете.

DEF Производители

Традиционные производители удобрений, вероятно, будут производить большую часть карбамида DEF, используемого в Соединенных Штатах. Производители в группе заинтересованных сторон SCR включают Agrium, Brenntag North America, Dyno Nobel, Koch Industries, Potash Corporation of Saskatchewan и Terra Industries.

Стивен Цварт из Stamicarbon говорит: «В Европе производство AdBlue стало благом для многих производителей удобрений, которые теперь выделяют часть своего производства на раствор мочевины для автомобильной промышленности.«

Логистика DEF

Кейт Стоукс говорит, что доставка карбамида на заправочные станции не должна быть проблемой. «Хотя в США более 30 000 заправок, только 2200 из них обеспечивают 97% рынка большегрузных автомобилей.

«Но в резервуарах для хранения мочевины в некоторых регионах потребуются нагревательные змеевики, чтобы поддерживать температуру замерзания раствора выше 12 ° F [-11 ° C]».

Pilot Travel Centers, крупнейший розничный оператор туристических центров в Соединенных Штатах, объявил о планах развертывания, чтобы сделать DEF доступным «на пике» в более чем 100 центрах в середине-конце 2009 г. в сентябре.29 пресс-релиз. В пилотных центрах также будет находиться предварительно упакованный DEF.

Производство водной мочевины

Между тем, по данным GreenCarCongress.com, Mitsubishi увеличивает производство высококачественного водного раствора мочевины для систем СКВ мочевины. Завод компании в Китакюсю, Япония, загружен примерно на 20% — около 2 миллионов литров в год. По мере увеличения спроса на SCR планируется увеличить производство до 10 миллионов литров в 2008 году и достичь 50% мощности в 2009 году.

Потребность Японии в высококачественной водной мочевине составляет около 20 000 килолитров в год, но отраслевые источники ожидают, что в будущем она вырастет примерно до 600 000 килолитров.

Потребность в более высоком производстве и более эффективном использовании мочевины

«Новые требования к карбамиду для обработки выхлопных газов дизельных двигателей сделают исследования по повышению эффективности его использования в качестве удобрения еще более важными», — говорит Рамон Лазо де ла Вега, старший технический специалист IFDC. «IFDC работает в трех основных областях для повышения эффективности использования мочевины: путем глубокого размещения брикетов мочевины, особенно на орошаемых рисовых полях; с помощью удобрений с контролируемым высвобождением; а также с помощью нитрификации и ингибиторов уреазы, которые уменьшают потери азота в воздух из-за улетучивания и в грунтовые воды за счет выщелачивания.

«Строятся также новые заводы по производству карбамида. Например, два крупных завода по производству карбамида открываются в Иране и по одному в Египте, Нигерии, Омане и России».

Амит Рой из

IFDC говорит: «Большинство основных удобрений, используемых сегодня, в том числе основные усовершенствования мочевины, используемой в фермерских хозяйствах, — были разработаны в рамках программы удобрений американского Управления долины Теннесси (TVA) в 1950-1970-х годах, когда казалось, что энергия дешево.При современной технологии производства энергетический эквивалент четырех баррелей нефти используется для преобразования «свободного» атмосферного азота в 1 тонну мочевины.

«Новые требования подчеркивают необходимость исследований для разработки новой линейки более энергоэффективных технологий — не только для пищевых продуктов, но теперь и для использования с топливом», — говорит Рой.

###

Водный раствор мочевины дестабилизирует олигомеры Aβ16–22

Аннотация

Мы используем длинные множественные траектории, созданные с помощью моделирования молекулярной динамики, для исследования стабильности олигомеров пептидов Aβ _16–22 (KLVFFAE) в водном растворе мочевины. Высокая концентрация мочевины способствует образованию структур β-цепей в мономерах Aβ _16–22 , тогда как в воде они принимают в значительной степени компактные структуры случайных клубков. Трипептидная система, образующая в воде стабильную антипараллельную β-пластинчатую структуру, дестабилизируется в растворе мочевины. Увеличение содержания β-цепи в мономерах и нарушение олигомерной структуры происходит в основном за счет прямого взаимодействия мочевины с пептидным остовом. Наше моделирование предполагает, что динамика разрыва связывания олигомера определяется двумя противоположными эффектами, а именно повышенной склонностью мономеров к образованию β-цепей и быстрым разрушением олигомеров.Качественные выводы подтверждены использованием двух моделей мочевины. Поскольку предложенный механизм дестабилизации во многом зависит от образования водородной связи между мочевиной и пептидным остовом, мы прогнозируем, что высокая концентрация мочевины будет дестабилизировать олигомеры других амилоидогенных пептидов.

Растущее число заболеваний связано с агрегацией белков и пептидов (1). Хотя белки, участвующие в этом классе заболеваний, известны, механизмы их агрегации в амилоидных структурах с характерным перекрестным β-паттерном до конца не изучены (2).Важно охарактеризовать каскад событий в пути сборки белков, связанных с заболеванием, из-за подозрения, что низкомолекулярные растворимые олигомеры и протофибриллы являются основной причиной нейротоксичности (3, 4). Обнаружение того, что обычное антитело распознает мобильные олигомеры, образованные из белков с небольшим сходством последовательностей или без него (5), предполагает, что существует ограниченное количество сценариев их образования (6). Более того, образование упорядоченных амилоидных агрегатов, по-видимому, является общим свойством всех полипептидных цепей (7).

Понимание факторов, которые вносят вклад в стабильность и динамику олигомеров амилоидных β (Aβ) пептидов, которые отщепляются от мембранного белка-предшественника амилоида на разную длину, необходимо для разработки методов блокирования их образования. Интерес к пептидам Aβ связан с их способностью образовывать амилоидные олигомеры и фибриллы, которые долгое время считались основными патогенными агентами болезни Альцгеймера (8). Амилоидогенный путь для пептидов Aβ представляет собой сложный каскад молекулярных событий, включающий большие конформационные изменения мономеров, образование растворимых олигомерных промежуточных продуктов и постепенное накопление протофибрилл и отложений фибрилл.Отличительным признаком сборки амилоида является появление упорядоченной перекрестной β-структуры, в которой пептиды Aβ ориентированы перпендикулярно оси фибрилл с образованием длинных β-листов. Эксперименты с твердотельным ЯМР начали раскрывать детали внутренней архитектуры амилоидных фибрилл, образованных пептидами Aβ дикого типа и их фрагментами (9–12). Эти эксперименты предполагают, что в зависимости от длины и последовательности возможны как параллельные, так и антипараллельные выровненные в регистре организации пептидов Aβ.Гораздо меньше известно о кинетике сборки амилоида. Экспериментальные исследования показали, что временное образование α-спиральной структуры может быть вовлечено в сборку амилоида (13). Этот результат поразителен, поскольку α-спиральные конформации отсутствуют как в структурах водных растворов мономеров (14), так и в амилоидных фибриллах (12).

Из-за сложности и общей природы сборки амилоидов молекулярные механизмы их образования могут быть выявлены путем детального изучения агрегации коротких пептидных фрагментов (15, 16).С помощью моделирования были предложены правдоподобные фибриллярные структуры пептидов Aβ различной длины (17). Фибрилляция фрагментов пептидов Aβ несет все характеристики амилоидогенеза полноразмерных пептидов дикого типа (11). Молекулярно-динамическое (МД) исследование сборки олигомеров Aβ _16–22 в явной воде (16) и моделирование фрагмента Sup35 с использованием неявного растворителя (18) показывают, что начальное образование мобильных олигомеров обусловлено гидрофобными боковыми цепями. и электростатические взаимодействия.Здесь мы исследуем влияние водного раствора мочевины на стабильность олигомеров Aβ _16–22 . Мы были заинтересованы в проведении этого исследования, поскольку взаимодействие мочевины с пептидами Aβ может пролить свет на механизмы амилоидогенеза. Кроме того, некоторые белки, такие как легкие цепи Ig, собираются в фибриллы в присутствии мочевины in vivo . Мы показываем, что, хотя мономеры Aβ _16–22 предпочитают конформации β-цепи в мочевине, олигомеры дестабилизируются при высоких концентрациях мочевины.

Методы

МД Моделирование. Мы выполнили МД-моделирование мономеров и олигомеров Aβ _16–22 (KLVFFAE) в водном растворе мочевины с использованием пакета moil (19) с протоколом, аналогичным описанному в ссылке. 16. Концы пептида Aβ _16–22 заряжены противоположно и блокированы нейтральными ацетильными и амидными группами. Начиная с гидратированной пептидной или олигомерной системы, уравновешенной при 300 К, мы случайным образом заменяли воду молекулами мочевины, принимая во внимание, что при 8 М мочевины отношение воды к молекулам мочевины составляет ≈4.5, а общая плотность раствора составляет 1,18 г / см ³ . Были удалены молекулы растворителя, вызывающие стерические столкновения. Полученная система затем была минимизирована по энергии, нагрета и уравновешена при 300 К в кубе (34,7 Å) ³ с периодическими граничными условиями (16).

Для проверки зависимости результатов моделирования от силового поля использовались две модели мочевины. Первый — это модель мочевины с оптимизированными потенциалами для моделирования жидкости (OPLS), в которой используется янтарная параметризация ковалентных взаимодействий (20, 21).Вторая модель разработана недавно Weerasinghe and Smith (WS) (22). Модель WS отличается от OPLS в основном значениями парциальных зарядов на кислород мочевины, который увеличен с –0,390 e до –0,675 e , и водород, который уменьшен с +0,333 e до +0,285 и . Модель WS также использует потенциал Леннарда – Джонса для водородов мочевины с σ = 0,158 нм и ε = 0,021 ккал / моль.

Детали моделирования. Для мономеров Aβ _16–22 были построены четыре траектории длительностью 10 нс для мочевины 8 M OPLS и четыре траектории продолжительностью 10,5 нс для мочевины WS 8 M. Также были выполнены две независимые серии МД-моделирования для олигомеров Aβ _16–22 в 8 М растворе мочевины. Начиная с неупорядоченной конформации олигомера (16), которая является предшественником антипараллельной структуры β-слоя в олигомере Aβ _16–22 , мы сгенерировали четыре траектории длиной 11 нс с использованием модели мочевины OPLS. Второй набор симуляций (модель WS, четыре 10.5-нс-траектории) тестировали стабильность упорядоченного антипараллельного реестра пептидов в олигомере Aβ _16–22 . Для этого набора моделирования мы начали со структуры, которая «близка» к упорядоченной антипараллельной конформации тримера Aβ _16–22 (16).

Зонды структуры Aβ _16–22 . Мы использовали ряд количеств для исследования индуцированных мочевиной изменений в мономерах и олигомерах Aβ _16–22 (16).В дополнение к зависящим от времени изменениям в содержании α-спирали и β-цепи, мы также вычислили распределения структурных состояний Aβ _16–22 [то есть доли β-цепи, α-спирали и случайного клубка ( RC) конформации], как описано в исх. 16. Целостность олигомеров Aβ _16–22 исследовали с использованием расстояния между центрами масс пептидов i и j , и доступной площадью поверхности (ASA) A ( t ) .

Зонды Aβ _16–22 Сольватация. Для исследования водородных связей (ВС) пептид – растворитель рассчитаны парные корреляционные функции г _H-O ( r ), которые сообщают о распределении плотности растворителя по расстоянию между атомами водорода (H) и кислорода (O). Для справки мы использовали атомы основной цепи, которые представляют собой кислород карбонила O _B , кислород в боковой цепи Glu O _E , амидный водород H _B или атомы водорода в боковой цепи Lys H _K . Атомом растворителя является либо кислород воды O _W и водород H _W , либо кислород мочевины O _U и водород H _U .Парные корреляционные функции рассчитывались путем усреднения по всем сохраненным конформациям и парам HO по всем траекториям, полученным в данном наборе моделирования. Все функции g ( r ) нормализованы для приближения к единице при r → ∞. Первый максимум в g ( r ) соответствует образованию первой сольватной оболочки (FSS) вокруг основного атома. Если не указано иное, FSS относится к отдельному атому основной цепи. Мы также определяем совместный FSS, который объединяет все FSS идентичных атомов в пептиде.Backbone FSS представляет собой объединение совместных FSS O _B и H _B . Мы считаем только отдельные атомы растворителя в совместных или основных FSS.

Чтобы убедиться, что функции g ( r ) точно описывают HBs, мы вычислили доли молекул растворителя FSS, которые фактически образуют HB с пептидом. (HB образуется, если расстояние между донором D и акцептором A составляет ≤3,5 Å и угол D-H … A ≥ 120 °.) В среднем> 90% молекул растворителя FSS связаны водородными связями с атомами пептида.Эти расчеты подтверждают анализ водородных связей на основе г ( r ).

Результаты

Мочевина увеличивает содержание β-цепей в Aβ _16–22 Мономеры. Наша предыдущая работа показала, что в воде почти 70% мономеров Aβ _16–22 находятся в состоянии RC, тогда как конформации β-цепи составляют 29% (16). Чтобы исследовать изменения конформации мономера в 8 М водной мочевине, мы построили четыре траектории длительностью 10 нс. Классифицируя конформации пептида как α-спираль, β-цепь и RC (16), мы обнаруживаем, что доля конформаций β-цепи (0,53) больше, чем состояние RC, тогда как популяция α-спирали незначительна (0,01 ). Таким образом, 8 М водная мочевина способствует образованию β-цепи за счет конформации RC. Моделирование мономеров Aβ _16–22 в 4 M мочевине также показывает повышенную склонность к β-цепям, которая очень похожа на таковую при 8 M. Повышенное содержание β-цепей в мономерах Aβ _16–22 имеет последствия для стабильность олигомеров (см. ниже).

Индуцированные мочевиной изменения конформации пептидов отражаются в распределении расстояния от конца до конца P ( r _1Н ) (рис.1). В среднем р _1N в 8 M мочевины (14 Å) больше, чем 〈 r _1N 〉 = 12 Å в воде. Что еще более важно, P ( r _1N ) в 8 М растворе мочевины и воде кардинально отличаются (рис.1). В водном растворе мочевины P ( r _1N ) имеет единственный пик при ≈15 Å. Напротив, в воде есть три максимума, два из которых (при ≈10 и 14 Å) содержат смесь конформаций β-цепи и RC. Третий максимум при ≈ 6.5 Å представляет только состояния RC. Широкое распространение P ( r _1N ) в воде согласуется с большой долей состояний RC и более слабой склонностью к β-нитевым структурам.Увеличение 〈 r _1N 〉 в мочевине коррелирует с изменениями в ASA, которая возрастает от 1,159 Å ² в воде до 1,219 Å ² в растворе мочевины. Таким образом, различные измерения показывают, что 8 M мочевина способствует образованию β-цепи в мономерах Aβ _16–22 .

Инжир. 1.

Распределения сквозного расстояния P ( r _1N ) для мономера Aβ _16–22 в водной мочевине OPLS ( A ) и воде ( B ). Включение P ( r _1N ) распределение в сторону большего r _1N указывает на то, что пептиды Aβ _16–22 имеют более протяженные открытые структуры в растворе мочевины.

Электростатические взаимодействия между мочевиной и основной цепью пептидов приводят к образованию β-цепей в Aβ _16–22 Мономеры. Чтобы исследовать механизм повышенной склонности к β-цепям в 8 М растворе мочевины, мы проанализировали взаимодействия между мочевиной и пептидом, используя ряд парных корреляционных функций для выбранных атомов пептида и растворителя ( Методы ). Для этого использовали четыре траектории по 10 нс для мономера Aβ _16–22 в 8 М мочевине OPLS.Взаимодействие между атомами водорода основной цепи H _B и кислородом воды O _W или мочевины O _U проанализировано с использованием функций g _{HB – OW} ( r ) (черный) и г _{HB – OU} ( r ) (серый) показывает предпочтение амидных групп основной цепи для образования HBs с мочевиной по сравнению с водой (рис. 2). Максимальная концентрация O _U в ФСС позвоночника H _B (т.е.е., на расстоянии r = 1,8 Å между H _B и O _U , что характерно для оптимальной ГВ) превышает объемное значение в 3,2 раза, тогда как локальная плотность воды превышает объемную значение всего на ≈30%. Интегрируя г ( r ) по FSS, мы обнаруживаем, что среднее количество молекул мочевины и воды в FSS H _B составляет 0,43 и 0,58 соответственно. Следовательно, соотношение воды и кислорода мочевины в H _B FSS равно 1.3, тогда как в целом он составляет 4,5 (Методы , ). Следовательно, относительная концентрация мочевины в H _B FSS увеличивается в 3,3 раза. Мочевина также сольватирует карбонильные группы основной цепи лучше, чем вода, но предпочтение не столь велико, как для амидов основной цепи.

Рис. 2.

Парные корреляционные функции г _{HB – OU} ( r ) (серый) и г _{HB – OW} ( r ) (черный) исследует образование HBs между амидами основной цепи и молекулами мочевины или воды, соответственно.Собираются данные более 40 000 конформационных снимков мономеров Aβ _16–22 из четырех траекторий продолжительностью 10 нс в 8 М растворе мочевины OPLS. Существует явное предпочтение амидам основной цепи для образования HBs с молекулами мочевины. ( Вставка ) Функции г _{HB – OW} ( r ), полученный для водного раствора мочевины (серый) и воды (черный). Сходство между г Графики _{HB – OW} ( r ) предполагают, что мочевина вызывает минимальные возмущения в местной структуре воды.

Для дальнейшего исследования предпочтительной сольватации основной цепи Aβ _16–22 мочевиной мы контролировали количество молекул воды и мочевины в основной цепи FSS. Если группы основной цепи (амиды и карбонилы) не имеют предпочтения для образования HBs с мочевиной, то соотношение, где и — среднее количество молекул воды и мочевины в FSS основной цепи, соответственно. Однако моделирование показывает это, что подразумевает, что мочевина предпочтительно сольватирует пептидный каркас. Среднее количество молекул растворителя (воды и мочевины) в стыке H _B FSS составляет 5,3. Поскольку существует семь H _B в пептиде Aβ _16–22 , приблизительно одна молекула мочевины и одна молекула воды образуют одновременно две HBs (на молекулу растворителя) с амидами основной цепи (рис. 3). Подобные вычисления показывают, что в среднем одна из шести молекул мочевины, сольватирующих Aβ _16–22 основной цепи, перекрестно связывает амидные и карбонильные группы основной цепи. Интересно, что вода редко участвует в таком перекрестном мостиковом соединении амид-карбонил.Множественные HBs, образованные между единственной молекулой растворителя и основной цепью Aβ _16–22 , придают дополнительную стабильность конформациям расширенного пептида.

Рис. 3.

Иллюстрация механизма сольватации мономера Aβ _16–22 мочевиной (желтый) и водой (голубой).На картинке показаны молекулы растворителя в основной FSS, которая объединяет FSS H _B (бледно-синий) и O _B (бледно-красный). Lys, Glu и гидрофобные боковые цепи окрашены в синий, красный и зеленый цвета соответственно. Стабильные HBs между мочевиной и амидными группами приводят к значительному увеличению концентрации мочевины вблизи пептидного остова. Показано, что одна молекула мочевины перекрестно связывает амидные и карбонильные группы основной цепи, образуя две, O _U –H _B и H _U –O _B , HBs.Немногочисленные репрезентативные HB обозначены пунктирными линиями. Изображения были получены с использованием молмола (31).

Сольватированный мономер Aβ _16–22 в растворе мочевины очень подвижен с быстрым обменом молекулами растворителя вблизи основной цепи, происходящим в пикосекундной шкале времени. Среднее время пребывания воды в FSS H _B составляет 9 пс, тогда как соответствующее время пребывания для карбамид-амидного HB составляет 14 пс. Эти результаты согласуются с недавним моделированием денатурации белков мочевиной с помощью МД (23).Время жизни HB является еще одним показателем повышенного предпочтения мочевины над водой для сольватации основной цепи пептида Aβ _16–22 . Хотя общее количество молекул мочевины и воды около основной цепи пептида примерно постоянно, их индивидуальные значения претерпевают большие, иногда весьма коллективные, колебания. За интервалы времени всего 1 нс количество молекул мочевины в стыке H _B FSS изменилось с пяти до нуля, а количество вод увеличилось с одной до шести.

Склонность к β-цепям не связана с сольватацией заряженных и гидрофобных боковых цепей. Aβ _16–22 пептид имеет две заряженные боковые цепи (K и E) и пять смежных гидрофобных остатков. Чтобы исключить возможность того, что сольватация боковых цепей мочевиной увеличивает склонность к β-цепям, мы контролировали сольватацию K, E и гидрофобных остатков. Сравнение парных корреляционных функций г _{H K} –O _U ( r ) и г _{H K –O W} ( r ) показывает, что амидная группа в боковой цепи лизина лучше сольватируется водой, чем мочевина (рис.4). Образование второй сольватной оболочки указывает на дальнейшее структурирование воды вокруг боковой цепи Lys. Подсчитав количество молекул воды и мочевины в FSS H _K , мы пришли к выводу, что относительная (по отношению к мочевине) концентрация воды увеличивается на 50%. Аналогичный эффект наблюдается для боковой цепи глутаминовой кислоты (данные не показаны), в которой атомы кислорода O _E принимают большую часть HB из воды. Относительная (по отношению к водородам мочевины) концентрация водородов воды в FSS O _E увеличивается почти на 30%. Таким образом, вода сольватирует заряженные остатки Lys и Glu в большей степени, чем мочевина.

Рис. 4.

Парные корреляционные функции г _{HK – OU} ( r ) (серый) и г _{HK – OW} ( r ) (черный) характеризует сольватацию положительно заряженной боковой цепи лизина мочевиной и водой соответственно.Вода сольватирует лизин лучше, чем мочевина. Упорядоченная вторая гидратная оболочка около H _K дает второй пик в г ( r ). Данные были собраны, как на рис. 2.

Взаимодействия между мочевиной и гидрофобными боковыми цепями исследуются с помощью парных корреляционных функций г _{CM H -CM S} ( r ) между центрами масс гидрофобных боковых цепей CM _H (H = L, V, F, A) и молекулами растворителя CM _S (S = W, U).Наблюдается повышение концентрации мочевины вблизи боковых цепей Phe по сравнению с ее объемным значением, тогда как концентрация воды практически не изменяется (рис. 5). Качественно аналогичные результаты были получены и для других гидрофобных остатков. Чтобы установить, является ли хорошо сформированный FSS мочевины вокруг боковой цепи Phe просто следствием HBs между мочевиной и основной цепью Aβ _16–22 , а не из-за благоприятных взаимодействий с гидрофобными остатками, мы вычислили ограниченные парные корреляционные функции, которые исключают молекулы мочевины, взаимодействующие с пептидным остовом.В таком случае. максимальная концентрация мочевины в Phe FSS едва достигает объемного значения (рис. Врезка ). Следовательно, образование HBs между мочевиной и пептидным остовом автоматически увеличивает концентрацию мочевины вокруг гидрофобных остатков. Взятые вместе, эти результаты показывают, что повышенная склонность к β-цепям в пептидах Aβ _16–22 вызывается образованием прямой водородной связи между атомами кислорода мочевины и атомами водорода основной цепи (21, 24–26).

Инжир.5.

Парные корреляционные функции г _{CMH – CMS} ( r ) исследуют сольватацию гидрофобной боковой цепи Phe. CM _F — это центр массы боковой цепи Phe, а S — это вода W (черный) или мочевина U (серый). Превышение концентрации мочевины в Phe FSS полностью связано с HBs между мочевиной и основной цепью пептида. ( Вставка ) Когда г _{CMF – CMU} ( r ) ограничивается молекулами мочевины, не связанными с основной цепью, превышения концентрации мочевины больше не наблюдается.Данные собраны, как на рис. 2.

Структура воды не нарушена мочевиной. HBs с водным каркасом не изменяются мочевиной. Например, функции g _{HB – OW} ( r ) (рис. 2 Вставка ) для Aβ _16–22 мономеры в воде и водной 8 М мочевине почти идентичны. Хотя среднее количество молекул воды в стыке H _B FSS уменьшается с 4.6 в воде до 3,1 в растворе мочевины, характеристики гидратации пептидного остова водой остаются неизменными. Подобные наблюдения были сделаны ранее (27). Этот результат поразителен, потому что в среднем около амидных групп основной цепи находится 2,2 молекулы мочевины.

Электростатически индуцированное усиление склонности к β-нитям в мочевине является общим. Чтобы убедиться, что предложенный механизм повышенной склонности к β-цепям не является артефактом потенциалов OPLS мочевины, мы использовали недавно разработанную модель мочевины WS (22) для генерации четырех 10. Траектории 5 нс для мономеров Aβ _16–22 . Сравнение результатов с использованием двух моделей приводит к следующим выводам: ( i ) Индуцированная мочевиной склонность к β-структуре более выражена для модели WS. Доля пептидов в состоянии β-цепи увеличивается с 0,53 (OPLS) до 0,68 (WS), тогда как доля RC уменьшается с 0,46 до 0,32. ( ii ) Сольватация пептидов Aβ _16–22 мочевиной WS значительно усиливается. Максимум г _{H B –O U} ( r ) функция увеличивается в 2 раза по сравнению с моделью мочевины OPLS.Это приводит к увеличению в 5,5 раз локальной концентрации мочевины по отношению к воде в H _B FSS. Повышенная стабильность карбамидных амидных HBs увеличивает среднее время пребывания молекул мочевины в FSS H _B с 14 пс (OPLS) до 25 пс (WS). ( iii ) Как следствие усиления сольватации пептидного остова с мочевиной WS, сольватация гидрофобных остатков также увеличивается. В среднем модель WS добавляет одну молекулу мочевины и удаляет около четырех молекул воды из объединенного FSS гидрофобных остатков.

Несмотря на количественные различия, обе модели качественно согласуются в отношении механизма сольватации мономеров Aβ _16–22 в водной мочевине. Разница между моделями WS и OPLS возникает из-за различий в парциальных зарядах мочевины и учета взаимодействий Леннарда-Джонса для водородов мочевины ( Методы ). Улучшение сольватации основной цепи и дополнительное усиление склонности к β-структурам для модели мочевины WS прослеживаются исключительно благодаря этим модификациям.Следовательно, основным фактором взаимодействия мочевины с мономерами Aβ _16–22 являются электростатические взаимодействия, которые ответственны за образование HBs между мочевиной и пептидным остовом. Увеличение содержания β-структуры является следствием взаимодействия между амидами основной цепи и молекулами мочевины.

Мочевина дестабилизирует Aβ _16–22 Олигомеры. Наша предыдущая работа показала, что в воде тримеры Aβ _16–22 могут быстро образовывать неупорядоченные олигомеры (DO) (16).DO стабилизируются благоприятными межпептидными взаимодействиями между гидрофобными остатками. Поскольку структуры DO обычно не имеют необходимых межпептидных солевых мостиков, они не образуют антипараллельные β-листы. Низкоэнергетические структуры тримеров Aβ _16–22 представляют собой упорядоченные олигомеры (OO), которые стабилизируются не только за счет межпептидных гидрофобных контактов, но и за счет солевых мостиков между боковыми цепями Lys ⁺ и Glu ^— . В OO Aβ _16–22 пептиды расположены в антипараллельных β-листах (16).Чтобы исследовать механизм дестабилизации олигомеров Aβ _16–22 в 8 M мочевине, мы использовали как DO, так и структуру, которая быстро превращается в OO, в качестве исходных конформаций.

Мы использовали исходную структуру DO для тримера Aβ _16–22 для создания четырех независимых траекторий продолжительностью 11 нс для исследования влияния 8 М раствора мочевины на олигомеры Aβ _16–22 . Существует неоднородность временных масштабов и путей отсоединения пептидов от олигомера.На одной из траекторий расстояния между центрами масс увеличиваются более чем в 2 раза за 11 нс. Рост отражает отделение пептида 1 от олигомера. К концу траектории (> 8 нс) оставшийся димер, состоящий из пептидов 2 и 3, также распадается, поскольку все межпептидные контакты разрушаются (рис. 6). Когда олигомер распадается на части, ASA увеличивается с ≈2 700 до 3500 Å ² (увеличение на 30%). Другая траектория показывает, что расстояния и более чем удваиваются через 2 нс, потому что пептид 3 отрывается от олигомера.Следовательно, ASA возрастает с ≈ 2700 до 3300 Å ² . Эти результаты резко контрастируют с динамикой олигомеров Aβ _16–22 в воде, в которой расстояния между центрами масс пептидов не изменяются в одном и том же масштабе времени (16).

Рис. 6.

Распад DO на одной из траекторий для 8 M раствора мочевины OPLS проиллюстрирован той же цветовой схемой, что и на рис.3. Неповрежденный DO слева стабилизируется за счет межпептидных гидрофобных взаимодействий. Через десять наносекунд DO полностью разрушается, когда все межпептидные контакты боковой цепи разрываются и мочевина проникает между пептидами Aβ _16–22 . Молекулы воды и мочевины образуют FSS вокруг пептидов. Изображения были получены с использованием молмола (31).

Расстояния между центрами масс пептидов, и ASA, 〈 A ( t )〉, усредненные по четырем траекториям, показывают, что за 11 нс увеличивается на ≈50%, тогда как 〈 A ( t ) )〉 Изменяется с <2,800 Å ² до 3,200 Å ² (изменение 14%).В воде ASA остается примерно постоянным, колеблясь между 2400 Å ² и 2600 Å ² . Ориентационный порядок в олигомере Aβ _16–22 значительно снижается мочевиной. Дисперсия ориентационного порядка δ d (16), усредненная по четырем траекториям в растворе мочевины, составляет 0,26, что больше, чем δ d = 0,16 для ДО в воде. Эти результаты показывают, что мочевина резко снижает стабильность олигомеров Aβ _16–22 .

Чтобы убедиться, что дестабилизация олигомеров Aβ _16–22 в водной мочевине не зависит от конкретной модели мочевины или начальных условий, мы также построили четыре траектории с использованием модели мочевины WS. В этом моделировании исходной структурой является та, которая способствует образованию ОО в воде (16). Моделирование OO с WS-мочевиной также демонстрирует резкое увеличение среднего ASA и расстояния между центрами масс пептидов, которые аналогичны тем, которые наблюдаются для DO. На трех из четырех траекторий по крайней мере один из пептидов полностью отрывается от олигомера. Тем не менее, масштаб времени разрушения OO больше, чем для DO, что согласуется с повышенной стабильностью OO. Например, за 10,5 нс ОО частично растворяются только на двух траекториях, тогда как на третьей траектории требуется почти 20 нс для отделения пептида 3 от олигомера. К концу моделирования WS большая часть межпептидных солевых мостиков в OO разрушена. Эти результаты указывают на постепенное распутывание Aβ _16–22 OO.

Динамика разрушения OO, вызванного мочевиной, отличается от разрушения DO. В относительно короткий период времени мочевина временно стабилизирует OO, способствуя межпептидным солевым мостикам Lys-Glu. Средняя вероятность обнаружения упорядоченных димерных структур составляет P _d ≈ 0,30 на шкале времени 10,5 нс. Для сравнения P _d , вычисленное на основе моделирования Aβ _16–22 OO в воде в сопоставимой шкале времени, меньше 0.01. Однако в большем масштабе времени (превышающем ≈20 нс) ОО-структуры все еще разрушаются. Таким образом, мы пришли к выводу, что возможная денатурация олигомеров Aβ _16–22 , вызванная мочевиной, не зависит от модели мочевины или начальных условий. Однако пути распада олигомеров Aβ _16–22 критически зависят от исходных структур.

Мочевина уменьшает время жизни α-спирального промежуточного соединения в Aβ _16–22 Олигомеры. Ранее мы показали, что доминирующим путем на ранних стадиях сборки Aβ _16–22 DO в воде является переход RC → α → β, в котором происходит временное накопление α-спирального интермедиата. Поскольку мономеры Aβ _16–22 склонны к образованию β-цепей в мочевине, мы ожидаем, что мочевина должна влиять на время жизни и стабильность α-спирального интермедиата. Содержание α-спирали 〈H ( t )〉 и β-цепи 〈S ( t )〉, усредненное по четырем траекториям для олигомеров Aβ _16–22 в 8 M мочевине, показывает, что 〈H ( t ) 〉 Изначально больше, чем 〈S ( t )〉.Однако в течение 1 нс 〈H ( t )〉 ≈ 〈S ( t )〉, а в больших временных масштабах содержание β-структуры быстро растет и выравнивается до ≈0,4, тогда как содержание α-спирали уменьшается. и остается постоянным на уровне ≈0,1.

Эти результаты качественно аналогичны динамике сборки в воде (16). Однако сравнение переходов α → β в воде и 8 M мочевине показывает, что мочевина уменьшает количество временно накопленной α-спиральной структуры (〈H ( t = 0) ≳ 0.4 в воде, но 0,3 в 8 М мочевине). Что еще более важно, α-спиральный интермедиат быстрее превращается в структуру β-цепи в мочевине. Для того чтобы 〈H ( t )〉 упала ниже 〈S ( t )〉 в водной мочевине, требуется <1 нс, в отличие от ≈5 нс в воде (16). Моделирование Aβ _16–22 OO с использованием модели мочевины WS качественно согласуется с таковыми, основанными на модели OPLS. Модель мочевины WS приводит к еще более быстрому переходу α → β и меньшему накоплению α-спирального промежуточного продукта, чем предсказывается моделью OPLS.

Образование водородной связи между мочевиной и основной цепью пептида дестабилизирует Aβ _16–22 Олигомеры. Чтобы исследовать молекулярный механизм разрушения олигомеров Aβ _16–22 мочевиной, мы вычислили несколько парных корреляционных функций во время первого и последнего сегментов длительностью 11 нс МД траекторий для ДО. Функция г _{HB – OW} ( r ) практически не меняется на шкале времени 11 нс (рис.7 Вставка , данные выделены черным цветом), что означает, что вода не играет важной роли в денатурации олигомеров. Напротив, взаимодействия олигомеров Aβ _16–22 с мочевиной сильно зависят от времени. Сравнение сольватации амидов пептидного остова мочевиной в течение первого и последнего интервалов 1 нс (рис. 7) показывает, что максимальная концентрация мочевины вблизи амидных водородов H _B увеличивается в 2,4 раза. Сольватация основной цепи мочевиной также усиливает сольватацию гидрофобных остатков.Соответственно, концентрация мочевины в FSS Phe увеличивается на 50% за 11 нс.

Рис. 7.

Парные корреляционные функции г _{HB – OU} ( r ) (для первой и последней наносекунд серого и черного цвета соответственно) вычисляются с использованием 11-нс моделирования Aβ _16–22 DO в 8 M растворе мочевины OPLS.Графики наглядно иллюстрируют «вторжение» молекул мочевины в олигомеры Aβ _16–22 . Концентрация мочевины около амидов основной цепи пептида увеличивается более чем вдвое за 11 нс. Напротив, гидратация пептидного остова проиллюстрирована на примере г _{HB – OW} ( r ) в Вставка практически не изменилась.

Радиальное распределение молекул воды и мочевины относительно центра масс олигомера г _{CM 0 –CM S} ( r ) (S = W, U) представляют собой яркую иллюстрацию проникновения растворителя в Aβ под действием мочевины. _16–22 DO (рис.8). В первую наносекунду внутренняя часть олигомера Aβ _16–22 практически сухая (рис. 8). Левый ). Концентрации мочевины и воды приближаются к их объемным значениям при r ≳ 12 Å, что примерно соответствует размерам олигомера. Через 11 нс «волна» молекул мочевины проникает в структуру олигомера (рис. 8). Правый ). Исключение воды из внутренней части олигомера, наблюдаемое при моделировании олигомеров Aβ _16–22 в воде (16) (сплошная кривая на рис.8) не показывает зависимости от времени. Следовательно, внутренняя часть олигомера Aβ _16–22 в воде остается сухой. Решающее различие между моделированием в воде и 8 M мочевине связано с резким «вторжением» растворителя (в основном мочевины) в олигомеры Aβ _16–22 в водной мочевине. Эти результаты показывают, что механизм дестабилизации олигомера аналогичен сольватации мочевиной мономера Aβ _16–22 , что приводит к увеличению содержания β-структуры.

Инжир.8.

Парные корреляционные функции г _{CM0 – CMW} ( r ) (черный) и г _{CM0 – CMU} ( r ) (серый) описывает проникновение растворителя в Aβ _16–22 DO в 8 M растворе мочевины OPLS (CM _O , CM _W и CM _U являются центрами масса молекул олигомера, воды и мочевины соответственно). В течение первой наносекунды олигомер Aβ _16–22 обычно лишен растворителя ( Left , в среднем по четырем траекториям).Спустя десять наносекунд ( Справа , данные для одной из траекторий) волна молекул мочевины и воды проникает в олигомер Aβ _16–22 , нарушая его стабильность. Моделирование олигомеров Aβ _16–22 в воде не показывает признаков проникновения растворителя, поскольку олигомер остается дегидратированным в течение 10,7 нс траекторий MD (сплошная кривая на слева ).

Обсуждение и выводы

Здесь мы сообщаем о моделировании МД пептидов и олигомеров Aβ _16–22 в 8 М водном растворе мочевины.Используя мономеры и олигомеры Aβ _16–22 , различные исходные структуры и две модели мочевины, мы получили ряд результатов, касающихся влияния мочевины на мономеры и олигомеры Aβ _16–22 .

Из-за преимущественной (по отношению к воде) сольватации пептидного остова мочевиной мономеры Aβ _16–22 претерпевают переход RC → β-цепь в водном растворе мочевины. По сравнению с водой, в которой преобладает состояние RC, большинство конформаций мономеров Aβ _16–22 в мочевине классифицируются как β-цепи.Образование HBs между мочевиной и амидами основной цепи увеличивает относительную (по отношению к воде) концентрацию мочевины около пептидного каркаса в 3-4 раза по сравнению с общим уровнем (в зависимости от конкретной модели мочевины). Этот эффект, имеющий электростатический характер, является доминирующим вкладом во взаимодействия мочевина-белок. Поскольку увеличение концентрации мочевины около гидрофобных остатков связано с образованием HBs между мочевиной и пептидным остовом, изменение гидрофобных взаимодействий, вызванное мочевиной, играет второстепенную роль.Эти результаты согласуются с ранее полученными экспериментальными и теоретическими данными (21, 24–26).

Молекулы мочевины проникают внутрь олигомеров Aβ _16–22 , образуя HBs с каркасом пептида. Как следствие, мочевина покрывает гидрофобные боковые цепи, увеличивает воздействие растворителя на олигомеры и ставит под угрозу их стабильность. Частичный или полный распад олигомеров Aβ _16–22 сопровождается резким ростом ASA. Динамика разрушения олигомеров Aβ _16–22 сложна и включает в себя ряд структурных изменений.Мочевина ускоряет переход α → β и дестабилизирует временный α-спиральный интермедиат, который представляет собой вид на пути, появляющийся до образования антипараллельного β-слоя в воде (16). Индуцированное мочевиной смещение β-цепи временно увеличивает популяцию упорядоченных антипараллельных димерных структур, которые стабилизируются солевыми мостиками. В более длительных временных масштабах олигомеры, независимо от исходной структуры, распадаются, потому что мономеры Aβ _16–22 , сольватированные с мочевиной, имеют более низкую свободную энергию, чем интактные олигомеры.Как показано в исх. 16, одни только электростатические взаимодействия не могут поддерживать стабильность олигомера Aβ _16–22 , когда гидрофобные взаимодействия нарушены.

Наши результаты показывают, что мочевина оказывает два противоположных эффекта на олигомеры Aβ _16–22 . Мочевина дестабилизирует олигомеры Aβ _16–22 , но также увеличивает содержание β-цепи в мономере. При небольшой концентрации мочевина, вероятно, ускоряет отложение амилоида, поскольку слабый денатурирующий эффект недостаточен для дестабилизации олигомеров.Однако при высоких концентрациях мочевины олигомеры Aβ _16–22 дестабилизируются, что, в свою очередь, блокирует образование амилоидных фибрилл. Из-за противоположных эффектов должна быть оптимальная концентрация мочевины, при которой скорость амилоидогенеза максимальна. Этот вывод согласуется с предсказанием «оборота» скорости сборки амилоида в зависимости от концентрации денатуранта (28), которое было основано на механизме кинетического разделения для мономерного фолдинга (29). «Оборот» также наблюдался в недавнем экспериментальном исследовании Hamada и Dobson (30), которые изучали влияние мочевины на скорость отложения амилоида лизоцима.Поскольку механизмы стимулирования склонности к β-цепям в мономерах Aβ _16–22 и дестабилизации олигомеров, вероятно, являются общими, скорость отложения амилоида должна, в целом, демонстрировать немонотонную зависимость от концентрации мочевины, с максимумом около концентрация равновесия между мономерными и олигомерными видами.

Благодарности

Эта работа была частично поддержана грантом Национального института здравоохранения IR01 NS41356-01.

Сноски

• ↵ † Кому может быть адресована корреспонденция. Электронная почта: thirum {at} glue.umd.edu или dklimov {at} gmu.edu.

• Этот документ был отправлен напрямую (Трек II) в офис PNAS.

• Сокращения: Aβ, амилоид β; MD, молекулярная динамика; OPLS, оптимизированные потенциалы для моделирования жидкостей; WS, Weerasinghe and Smith; RC, случайная катушка; ASA, доступная площадь поверхности; HB — водородная связь; FSS, первая сольватационная оболочка; DO, неупорядоченные олигомеры; Оо, заказал олигомеры.

• Copyright © 2004, Национальная академия наук

Удаление мочевины из водных растворов — обзор

1.

Simka W, Piotrowski J, Robak A, Nawrat G (2009) Электрохимическая обработка водных растворов, содержащих мочевину. J Appl Electrochem 39: 1137

CAS Статья Google Scholar

2.

Meessen JH (2010) Мочевина. В: Энциклопедия промышленной химии Ульмана.Wiley-VCH, Вайнхайм

Google Scholar

3.

Koebel M, Elsener M, Kleemann M (2000) Мочевина-СКВ: многообещающий метод снижения NO _x выбросы от автомобильных дизельных двигателей. Catal Today 59: 335

CAS Статья Google Scholar

4.

Эдриси А., Мансури З., Дабир Б. (2016) Синтез мочевины с использованием химического цикла — технико-экономическая оценка новой конфигурации завода для зеленого производства.Inter J Greenh Gas Contr 44:42

CAS Статья Google Scholar

5.

Simka W, Piotrowski J (2007) Методы удаления мочевины из водных растворов. Przem Chem 86: 841 (на польском языке)

CAS Google Scholar

6.

Горловский Д.М., Альтшулер Л.Н. (1981) Технология карбамида. Хим, Ленинград

Google Scholar

7.

Krajewska B (2002) Ureazy: znaczenie, właściwości i kataliza. Wiad Chem 56: 223 (на польском языке)

CAS Google Scholar

8.

Викторов В.А., Варин А.Н., Гринвальд В.М., Максимов Е.П., Фомичева Н.Н., Завалишин Ю.К. и др. (2003) Состояние и перспективы развития отечественного оборудования для гемодиализа с регенерацией диализата. Biomed Eng 37:16

Статья Google Scholar

9.

Kotuła E (2000) Materiały III Kongresu Technologii Chemicznej. Wyd Pol Śl, Гливице (на польском языке)

Google Scholar

10.

Piotrowski J, Koszałka A, Simka W (2003) Badania processu elektrochemicznego utleniania mocznika na elektrodzie Ti / Pt. Chem Inż Ekol 10 (S1): 123 (на польском языке)

CAS Google Scholar

11.

Махалик К., Саху Дж., Патвардхан А. В., Мейкап BC (2010) Кинетические исследования гидролиза мочевины в полупериодическом реакторе при атмосферном давлении для безопасного использования аммиака на электростанции для кондиционирования дымовых газов. J Hazard Mater 175: 629

CAS Статья Google Scholar

12.

Krajewska B (2009) Уреазы I Функциональные, каталитические и кинетические свойства: обзор. J Mol Catal B: -Enzym 59: 9

CAS Статья Google Scholar

13.

Krajewska B (2002) Уреазы: роли, свойства и катализ. Wiadom Chem 56: 226

Google Scholar

14.

Odake S, Morikawa T, Tsuchiya M, Jmamura L, Kobashi K (1994) Ингибирование активности уреазы Helicobacter pylori производными гидроксамовой кислоты. Биол Фарм Булл 17: 1329

КАС Статья Google Scholar

15.

Keerthisinghe DG, Blakeley RL (1995) Ингибирование уреазы бобов джек фосфорными и тиофосфоритриамидами.Почва Биол Биохим 27: 739

CAS Статья Google Scholar

16.

Mazurkiewicz JC, Bingham SA, Runswick S, Ang BCN (1993) Ингибирование уреазной реакции борной кислотой. Ann Clin Biochem 30: 215

CAS Статья Google Scholar

17.

Наринесинг Д., Мунгал Р., Нго ТТ (1994) Метод скрининга для анализа следов ртути с использованием проточной инъекции с ингибированием уреазы и детектированием флуоресценции.Анальный фильтр Acta 292: 185

CAS Статья Google Scholar

18.

Krajewska B, Zaborowska W, Leszko M (1997) Ингибирование уреазы, иммобилизованной хитозаном, борной кислотой, как определено методами интеграции. J Mol Catal B-Enzym 3: 231

CAS Статья Google Scholar

19.

Krajewska B (1991) Уреаза, иммобилизованная на хитозановой мембране. Инактивация ионами тяжелых металлов.J Chem Tech Biotechnol 52: 157

CAS Статья Google Scholar

20.

Лешко М., Заборска В. (1993) Ингибирование активности уреазы в нативной форме и иммобилизованной на хитозановой мембране фторидом натрия. J Chem Tech Biotechnol 57: 113

CAS Статья Google Scholar

21.

Krajewska B, Zaborska W (1999) Влияние фосфатного буфера в диапазоне pH 580–807 на активность уреазы бобов.Фермент J Mol Catal B 6:75

CAS Статья Google Scholar

22.

Данешфар А., Мацуура Т., Эмадзаде Д., Пахлевани З., Исмаил А.Ф. (2015) Электропряденый полиакрилонитрильный мат с уреазой для гидролиза мочевины. React Funct Polym 87:37

CAS Статья Google Scholar

23.

Magne V, Amounas M, Innocent C, Dejean E, Seta P (2002) Ферментный текстиль для удаления мочевины с помощью процесса сочетания: ферментативная реакция и электродиализ.Опреснение 144: 163

CAS Статья Google Scholar

24.

Musiani F, Arnofi E, Casadio R, Ciurli S (2001) Структурированное вычислительное исследование каталитических и ингибирующих механизмов уреазы. J Biol Inorg Chem 6: 300

CAS Статья Google Scholar

25.

Суарез Д., Диаз Н., Мерц К.М. (2003) Уреазы: квантово-химические расчеты на кластерных моделях.J Am Chem Soc 125: 15324

CAS Статья Google Scholar

26.

Андрих Л., Эсти М., Мореси М. (2010) Кинетика разложения мочевины в модельных винных растворах кислотной уреазой, иммобилизованной на гранулах производных хитозана разных размеров. Enzyme Microb Technol 46: 397

CAS Статья Google Scholar

27.

Андрих Л., Эсти М., Мореси М. (2009) Разложение мочевины в модельных винных растворах свободной или иммобилизованной кислой уреазой в перемешиваемом биореакторе.J Agric Food Chem 57: 3533

CAS Статья Google Scholar

28.

Lin C-C, Yang M-C (2003) Проникновение и гидролиз мочевины через диализатор из полых волокон, иммобилизованный уреазой: свойства хранения и эксплуатации. Биоматериалы 24: 1989

CAS Статья Google Scholar

29.

Yang M-C, Lin C-C (2001) Проникновение и гидролиз мочевины через диализатор из полых волокон, иммобилизованный уреазой.Биоматериалы 22: 891

CAS Статья Google Scholar

30.

Wong-Chong GM, Loehr RC (1975) Кинетика микробной нитрификации. Wat Res 9: 1099

CAS Статья Google Scholar

31.

Гупта С.К., Шарма Р. (1996) Биологическое окисление высокопрочных азотсодержащих сточных вод. Wat Res 30: 593

CAS Статья Google Scholar

32.

Фон Анен М., Педерсен Л.Ф., Педерсен П.Б., Далсгаард Дж. (2015) Разложение мочевины, аммиака и нитратов в биофильтрах с подвижным слоем, работающих при различных нагрузках. Aquacult Eng 69:50

Статья Google Scholar

33.

Конык Л.В., Таран П.Н., Гончарук В.В., Шевченко М.А. (1989) Озонолиз мочевины в разбавленных водных растворах. Хим Техн Воды 11 (7): 604

CAS Google Scholar

34.

Fuchs J (1959) Хлорирование воды в бассейне: скорость разложения мочевины. Chemiker Ztg Chem Aparatur 83 (7): 223 (на немецком языке)

CAS Google Scholar

35.

Nasuto R, Wójcik A, Kwietniewski L (1986) Адсорбция мочевины из водных растворов на диоксиде кремния и пористом сополимере глицидилметакрилата и этилендиметакрилата. Pol J Chem 60: 561

CAS Google Scholar

36.

Xue C, Wilson LD (2016) Кинетическое исследование поглощения мочевины с помощью сорбирующих материалов на основе хитозана. Углеводородный полимер 135: 180

CAS Статья Google Scholar

37.

Лю Дж, Чен Х, Шао З., Чжоу П. (2003) Получение и характеристика аффинной мембраны хитозан / Cu (II) для адсорбции мочевины. J Appl Polym Sci 90: 1108

CAS Статья Google Scholar

38.

Liu X, Sun S, Tang Y, Li S (2012) Получение и кинетическое моделирование сшитых хитозановых микросфер с иммобилизованным Zn (II) адсорбции мочевины. Анальный латыш 45: 1632

CAS Статья Google Scholar

39.

Zhu L-J, Liu F, Yu X-M, Gao A-L, Xue L-X (2015) Цвиттерионизация поверхности гемосовместимых мембран из поли (молочной кислоты) для гемодиафильтрации. J Membrane Sci 475: 469

CAS Статья Google Scholar

40.

Ананьев А.В., Броудич Дж. К., Броссард Ф. (2003) Разложение мочевины в процессе гетерогенной каталитической денитрации растворов азотной кислоты: часть I Кинетика реакции. Заявление Catal B 45: 189

CAS Статья Google Scholar

41.

Ананьев А.В., Броудич Дж. К., Броссард Ф. (2003) Разложение мочевины в процессе гетерогенной каталитической денитрации растворов азотной кислоты: часть II Продукты реакции и стехиометрия.Заявление Catal B 45: 197

CAS Статья Google Scholar

42.

Шен С., Ли М., Ли Б., Чжао З. (2014) Каталитический гидролиз мочевины из сточных вод с использованием различных оксидов алюминия в реакторе с неподвижным слоем. Environ Sci Pollut Res 21: 2563

Статья CAS Google Scholar

43.

Lundström A, Snelling T, Morsing P, Gabrielsson P, Senar E, Olsson L (2011) Изучены разложение мочевины и гидролиз HNCO над диоксидом титана.Fe-бета и γ-оксид алюминия. Appl Catal B 106: 273

Артикул CAS Google Scholar

44.

Bernhard AM, Peitz D, Elsener M, Wokaun A, Kröcher O (2012) Гидролиз и термолиз мочевины и ее побочных продуктов разложения биурета, циануровой кислоты и меламина над анатазом TiO ₂ . Appl Catal B 115–116: 129

Артикул CAS Google Scholar

45.

Боггс Б.К., Кинг Р.Л., Ботте Г.Г. (2009) Электролиз мочевины: прямое производство водорода из мочи.Chem Commun 32: 4859

Статья CAS Google Scholar

46.

Миллер А.Т., Хасслер Б.Л., Ботте Г.Г. (2012) Электроосаждение родия на никелевые электроды, используемые для электролиза мочевины. J Appl Electrochem 42: 925

CAS Статья Google Scholar

47.

Hernlem BJ (2005) Электролитическое разрушение мочевины в разбавленном растворе хлорида с использованием электродов DSA в повторно используемой ячейке периодического действия.Water Res 39: 2245

CAS Статья Google Scholar

48.

Осетрова Н.В., Скундин А.М. (2002) Продукты анодного окисления карбамида: влияние анионного состава раствора. Русс Дж Электрохим 38 (3): 266

CAS Статья Google Scholar

49.

Осетрова Н.В., Скундин А.М. (2002) Продукты анодного окисления карбамида: влияние температуры. Русс Дж Электрохим 38 (7): 791

CAS Статья Google Scholar

50.

Fels M (1978) Рециркуляция диализата из искусственной почки путем электрохимического разложения метаболитов отходов: мелкомасштабные лабораторные исследования. Med Biol Eng Comput 16:25

CAS Статья Google Scholar

51.

Громыко В.А., Цыганкова Т.Б., Гайдадымов В.Б., Васильев Ю.Б., Багоцкий В.С. (1974) Электроокисление мочевины на гладком платиновом электроде. II. Электрохимия 10:49

Google Scholar

52.

Bolzan AE, Iwasita T (1988) Определение летучих продуктов во время окисления мочевины на платине с помощью онлайн-масс-спектроскопии. Электрохим Акта 33: 109

CAS Статья Google Scholar

53.

Громыко В.А., Цыганкова Т.Б., Гайдадымов В.Б., Васильев Ю.Б. (1975) Электроокисление мочевины. iii. кинетика и механизм окисления при низких анодных потенциалах. Электрохимия 11 (4): 589

54.

Громыко В.А., Цыганкова Т.Б., Гайдаымов В.Б., Васильев Ю.Б. (1975) Влияние pH на скорость выделения кислорода и окисления мочевины на гладком платиновом электроде.Электрохимия 11 (3): 491

CAS Google Scholar

55.

Осетрова Н.В., Скундин А.М. (1994) Анодное окисление мочевины в нейтральных растворах. Русь Дж Электрохим 30 (10): 1145

Google Scholar

56.

Левина Г.Д., Сурженко С.С., Колосова Г.М., Сенявин М.М. (1975) Электроокисление мочевины на платиновом электроде. Электрохимия 11 (11): 1644

CAS Google Scholar

57.

Райт Дж. К., Майклс А. С., Эпплби А. Дж. (1986) Электроокисление мочевины на электроде из рутения-титана. AIChE J 32: 1450

CAS Статья Google Scholar

58.

Чо К., Хоффманн М.Р. (2014) Разложение мочевины электрохимически образующимися химически активными формами хлора: продукты и пути реакций. Environ Sci Technol 48: 11504

CAS Статья Google Scholar

59.

Simka W, Piotrowski J, Nawrat G (2007) Влияние материала анода на электрохимическое разложение мочевины. Электрохим Акта 52: 5696

CAS Статья Google Scholar

60.

Карлези Хара С., Ди Джулио С., Фино Д., Спинелли П. (2008) Комбинированное прямое и непрямое электроокисление воды, содержащей мочевину. J Appl Electrochem 38: 915

CAS Статья Google Scholar

61.

Роллинсон А.Н., Джонс Дж., Дюпон В., Твигг М.В. (2011) Мочевина как переносчик водорода: взгляд на ее потенциал для безопасного, устойчивого и долгосрочного энергоснабжения. Energ Environ Sci 4: 1216

CAS Статья Google Scholar

62.

Lan R, Irvine JTS, Tao S (2012) Аммиак и родственные химические вещества как потенциальные материалы для косвенного хранения водорода. Int J Hydrogen Energ 37: 1482

CAS Статья Google Scholar

63.

Vedharathinam V, Botte GG (2012) Понимание механизма электрокаталитического окисления мочевины на никелевых электродах в щелочной среде. Электрохим Акта 81: 292

CAS Статья Google Scholar

64.

Vedharathinam V, Botte GG (2013) Прямое доказательство механизма электроокисления мочевины на катализаторе Ni (OH) ₂ в щелочной среде. Электрохим Акта 108: 660

CAS Статья Google Scholar

65.

Vedharathinam V, Botte GG (2014) Экспериментальное исследование колебаний потенциала при электрокаталитическом окислении мочевины на никелевом катализаторе в щелочной среде. J Phys Chem C 118: 21806

CAS Статья Google Scholar

66.

Wang D, Botte GG (2014) Исследование электролиза мочевины на никелевых катализаторах методом дифракции рентгеновских лучей на месте. ECS Electrochem Lett 3 (9): h39

CAS Статья Google Scholar

67.

Guo F, Ye K, Du M, Huang X, Cheng K, Wang G, Cao D (2016) Анализ электрохимического импеданса механизма электроокисления мочевины на никелевом катализаторе в щелочной среде. Electrochim Acta. DOI: 10.1016 / j.electacta.2016.05.149

Google Scholar

68.

Zhang W, Yin S, Li X, Xu G, Xie T (2016) Влияние щелочного катиона на электрокаталитическое окисление мочевины и бензилового спирта на никелевом электроде.Electrochem Commun 63: 1

Статья CAS Google Scholar

69.

Кинг Р.Л., Ботте Г.Г. (2011) Производство водорода путем электролиза мочевины с использованием гелевого электролита. J Источники питания 196: 2773

CAS Статья Google Scholar

70.

Яо С.Дж., Вольфсон С.К. мл., Токарский Дж. М., Ан Б.К. (1974) Деуреация электрохимическим окислением. Bioelectroch Bioener 1: 180

CAS Статья Google Scholar

71.

Левина Г.Д., Сурженко С.С., Колосова Г.М., Сенявин М.М. (1975) Электроокисление мочевины на платиновом электроде. Сов Электрохим 11: 1536

Google Scholar

72.

Амстутц В., Кацаунис А., Капалка А., Комнинеллис С., Удерт К.М. (2012) Влияние карбоната на электролитическое удаление аммиака и мочевины из мочи с помощью термически подготовленных электродов IrO ₂ . J Appl Electrochem 42: 787

CAS Статья Google Scholar

73.

Катальдо Эрнандес М., Руссо Н., Паницца М., Спинелли П., Фино Д. (2014) Электрохимическое окисление мочевины в водных растворах с использованием тонкопленочного алмазного электрода, легированного бором. Diam Relat Mater 44: 109

Артикул CAS Google Scholar

74.

Li H, Yu Q, Yang B, Li Z, Lei L (2015) Электрокаталитическое окисление искусственной мочи человека с использованием электродов BDD и IrO ₂ . J Electroanal Chem 738: 14

CAS Статья Google Scholar

75.

Elaoud SC, Panizza M, Cerisola G, Mhiri T (2012) Разложение кумаровой кислоты методом электро-Фентона. J Electroanal Chem 667: 19

CAS Статья Google Scholar

76.

Видотти М., Сильва М.Р., Сальвадор Р.П., Кордова де Торрези С.И., Далл’Антония Л.Х. (2008) Электрокаталитическое окисление мочевины наноструктурированными электродами из гидроксида никеля / кобальта. Электрохим Акта 53: 4030

CAS Статья Google Scholar

77.

Кинг Р.Л., Ботте Г.Г. (2011) Исследование мультиметаллических катализаторов для получения стабильного водорода посредством электролиза мочевины. J Источники питания 196: 9579

CAS Статья Google Scholar

78.

Ван Д., Ян В., Ботте Г. Г. (2011) Нанолисты из расслоенного гидроксида никеля для электролиза мочевины. Electrochem Commun 13: 1135

CAS Статья Google Scholar

79.

Ян В., Ван Д., Ботте Г. Г. (2012) Катализаторы на основе биметаллических гидроксидов никеля и кобальта для электроокисления мочевины. Электрохим Acta 61:25

CAS Статья Google Scholar

80.

Ван Д., Ян В., Виджапур Ш., Ботте Г. Г. (2012) Усиленное электрокаталитическое окисление мочевины на основе нанолент гидроксида никеля. J Источники питания 217: 498

CAS Статья Google Scholar

81.

Ян В., Ван Д., Ботте Г. Г. (2012) Электрохимическое разложение мочевины с катализаторами на основе Ni. Заявление Catal B 127: 221

CAS Статья Google Scholar

82.

Ван Д., Ян В., Виджапур Ш., Ботте Г. Г. (2013) Электрохимически восстановленные нанокомпозиты оксид графена – никель для электролиза мочевины. Электрохим Акта 89: 732

CAS Статья Google Scholar

83.

Ding R, Qi L, Jia M, Wang H (2014) Легкий синтез мезопористой шпинели NiCo ₂ O ₄ наноструктур в качестве высокоэффективных электрокатализаторов для электроокисления мочевины. Наноразмер 6: 1369

CAS Статья Google Scholar

84.

Ян В., Ван Д., Диаз Л.Г., Ботте Г.Г. (2014) Нанопроволоки никеля как эффективные катализаторы электроокисления мочевины. Электрохим Акта 134: 266

CAS Статья Google Scholar

85.

Ван Л, Ли М, Хуанг З., Ли И, Ци С., Йи Ц, Ян Б. (2014) Нанокластерные катализаторы Ni-WC / C для электроокисления мочевины. J Источники питания 264: 282

CAS Статья Google Scholar

86.

Ван Л., Ду Т, Ченг Дж., Се Х, Ян Б., Ли М. (2015) Повышенная активность электроокисления мочевины на никелевых катализаторах, нанесенных на карбиды вольфрама / углеродные нанотрубки. Источники питания J 280: 550

CAS Статья Google Scholar

87.

Wu M-S, Ji R-Y, Zheng Y-R (2014) Электрод из гидроксида никеля с монослоем массивов наночастиц в качестве эффективного электрокатализатора для усиленного электролиза мочевины. Электрохим Акта 144: 194

CAS Статья Google Scholar

88.

Wu M-S, Lin G-W, Yang R-S (2014) Гидротермальный рост упорядоченных по вертикали нанолистов мезопористого оксида никеля на трехмерном никелевом каркасе для электрокаталитического окисления мочевины в щелочной среде.J Источники питания 272: 711

CAS Статья Google Scholar

89.

Guo F, Ye K, Cheng K, Wang G, Cao D (2015) Подготовка электрода из никелевых нанопроволок для электроокисления мочевины в щелочной среде. J Источники питания 278: 562

CAS Статья Google Scholar

90.

Liang Y, Liu Q, Asiri AM, Sun X (2015) Усиленное электроокисление мочевины с использованием NiMoO ₄ · xH ₂ O массивы нанолистов на пене Ni в качестве анода.Электрохим Акта 153: 456

CAS Статья Google Scholar

91.

Ye K, Zhang D, Guo F, Cheng K, Wang G, Cao D (2015) Высокопористая никелевая углеродная губка как новый тип трехмерного алюминиевого анода с низкой стоимостью для высоких каталитических характеристик мочевины электроокисление в щелочной среде. J Источники питания 283: 408

CAS Статья Google Scholar

92.

Barakat NAM, Motlak M, Ghouri ZK, Yasin AS, El-Newehy MH, Al-Deyab SS (2016) Графен, декорированный наночастицами никеля, как высокоэффективный и стабильный электрокатализатор для электроокисления мочевины. J Mol Catal A: Chem 421: 83

CAS Статья Google Scholar

93.

Ян В., Ван Д., Ботте Г. Г. (2015) Синтез биметаллических нанопроволок Ni – Co с помощью матрицы для электрокаталитического окисления мочевины. J Appl Electrochem 45: 1217

CAS Статья Google Scholar

94.

Barakat NAM, El-Newehy MH, Yasin AS, Ghouri ZK, Al-Deyab SS (2016) Углеродные нановолокна, декорированные наночастицами Ni и Mn, как эффективный электрокатализатор для окисления мочевины. Appl Catal A 510: 180

CAS Статья Google Scholar

95.

Вилана Дж., Гомес Э., Валлес Э. (2016) Влияние состава и кристаллической фазы электроосажденных пленок CoNi на подготовку окисленных CoNi поверхностей в качестве электродов для электроокисления мочевины.Appl Surf Sci 360: 816

CAS Статья Google Scholar

96.

Chen JD, Lo NC, Huang GG, Chen PY (2015) Простая в приготовлении электрохимическая платформа, состоящая из композитов ионный жидкий Ni (II) -графит: лабораторные исследования электрохимического окисления мочевины, спиртов, и глюкоза. Электрохим Акта 182: 113

CAS Статья Google Scholar

97.

Keller RW Jr, Yao SJ, Brown JM, Wolfson SK Jr, Zeller MV (1980) Электрохимическое удаление мочевины из физиологического буфера как основа для регенеративной диализной системы.J Electroanal Chem 116: 469

Статья Google Scholar

98.

Keller Jr RW, Yao SJ, Brown JM, Wolfson Jr SK (1979) Электрохимическое удаление мочевины: основа системы регенеративного диализа. J Sound Vib IEEE Eng in Med and Biol Soc Annu Conf Proceedings 59–63

99.

Fels M (1982) Рециркуляция диализата из искусственной почки путем электрохимического разложения метаболитов отходов: исследования в реакторах непрерывного действия.Med Biol Eng Comput 20: 257

CAS Статья Google Scholar

100.

Гинвальд В.М., Яколева А.А., Лещинский Г.М. (2002) Принципы построения электрохимического регенератора диализата для аппарата искусственной почки. Biomed Eng 36: 199

Статья Google Scholar

101.

Гинвальд В.М., Лещинский Г.М., Родин В.В., Стрелков С.И., Яколева А.А. (2003) Разработка и испытание установки для электрохимического окисления продуктов гемодиализа.Biomed Eng 37:67

Статья Google Scholar

102.

Максимов Е.П., Лещинский Г.М., Гинвальд В.М., Фомичева Н.Н., Шадиев Б.Ш. (2003) Коррекция состава диализата при электрохимической регенерации. Biomed Eng 37:73

Статья Google Scholar

103.

Вестер М., Симонис Ф., Лачкар Н., Водзиг В.К., Меувиссен Ф.Дж., Коуман JP (2014) Удаление мочевины в переносном диализном устройстве: новая оценка электроокисления.Искусственные органы 38 (12): 998

CAS Статья Google Scholar

104.

Lan R, Tao S, Irvine JTS (2010) Топливный элемент прямого действия на основе мочевины — энергия из удобрений и отходов. Energ Environ Sci 3: 438

CAS Статья Google Scholar

105.

Лан Р., Тао С. (2011) Получение наноразмерного никеля в качестве анодного катализатора для топливных элементов прямого действия на основе мочевины и мочи. J Источники питания 196: 5021

CAS Статья Google Scholar

106.

Cinti G, Desideri U (2015) ТОТЭ, работающее на реформированном карбамиде. Appl Energ 145: 242

Статья CAS Google Scholar

107.

Xu W, Zhang H, Li G, Wu Z (2014) Никель-кобальтовые биметаллические анодные катализаторы для топливных элементов прямого действия на основе мочевины. Научный представитель 4: 5863

CAS Статья Google Scholar

108.

Serban EC, Balan A, Iordache AM, Cucu A, Ceaus C, Necula M, Ruxanda G, Bacu C, Mamut E, Stamatin I (2014) Топливный элемент на основе мочевины / перекиси водорода.Dig J Nanomater Bios 9: 1647

Google Scholar

109.

Nagao M, Kobayashi K, Hibino T (2015) Топливный элемент с прямым мочеиспусканием, работающий при промежуточных температурах. Chem Lett 44: 363

CAS Статья Google Scholar

110.

Xu W, Zhang H, Li G, Wu Z (2016) Топливный элемент моча / Cr (VI) — Электроэнергия от обработки тяжелых металлов и человеческой мочи. J Electroanal Chem 764: 38

CAS Статья Google Scholar

111.

Guo F, Cao D, Du M, Ye K, Wang G, Zhang W, Gao Y, Cheng K (2016) Повышение производительности топливных элементов на основе прямого карбамида-пероксида водорода с помощью трехмерного пористого никель-кобальтового анода. J Источники питания 307: 697

CAS Статья Google Scholar

112.

Guo F, Cheng K, Ye K, Wang G, Cao D (2016) Приготовление анодного электрокатализатора из никель-кобальтовых нанопроволок и его применение в топливных элементах прямого действия на основе мочевины / перекиси водорода.Электрохим Акта 199: 290

CAS Статья Google Scholar

113.

Ватанабе Х., Ниши Х., Хамана Х., Секиока Н., Ван Х, Учияма С. (2009) Биоэлектрохимическое преобразование мочевины в азот с использованием аминированного угольного электрода. J Environ Sci 21: S96

Статья Google Scholar

114.

Laurinavicius V, Razumiene J, Gureviciene V (2013) Биоэлектрохимическое преобразование мочевины на электроде из углеродной сажи и применение.IEEE Sens J 13: 2208

CAS Статья Google Scholar

115.

Николау Э., Фонсека Дж. Дж., Родригес-Мартинес Дж. А., Ричардсон Т. М., Флинн М., Грибенов К., Кабрера С. Р. (2014) Оценка биоэлектрохимической системы мочевины для процессов очистки сточных вод. ACS Sustain Chem Eng 2: 749

CAS Статья Google Scholar

116.

Санторо С., Иеропулос И., Гринман Дж., Кристиани П., Вадас Т., Маккей А., Ли Б. (2013) Производство электроэнергии и удаление загрязняющих веществ в однокамерных микробных топливных элементах (SCMFC), обрабатывающих мочу человека.Int J Hydrog Energ 38: 11543

CAS Статья Google Scholar

117.

Санторо С., Иеропулос И., Гринман Дж., Кристиани П., Вадас Т., Маккей А., Ли Б. (2013) Генерация тока в безмембранных однокамерных микробных топливных элементах (МТЭ), обрабатывающих мочу. J Источники питания 238: 190

CAS Статья Google Scholar

118.